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1、作為Armadillo蛋白亞家族中的重要成員之一的p120-catenin(p120ctn)一直被認(rèn)為是E—cadherin/catenin黏附復(fù)合物的重要調(diào)節(jié)因子。同時(shí),p120ctn也是小GTP酶的重要調(diào)節(jié)因子,它可以在細(xì)胞漿中通過調(diào)節(jié)小GTP酶的活性狀態(tài)來調(diào)控細(xì)胞骨架的裝配,它在細(xì)胞黏附以及腫瘤侵襲和轉(zhuǎn)移方面的作用已經(jīng)受到人們的廣泛重視。大量研究表明,p120ctn的異常表達(dá)與腫瘤的發(fā)生、侵襲和轉(zhuǎn)移密切相關(guān)。隨著研究的深入,特別是
2、核轉(zhuǎn)錄因子Kaiso的發(fā)現(xiàn),人們發(fā)現(xiàn)p120ctn還可以作為一種信號(hào)分子穿梭于核/漿之間,通過影響核轉(zhuǎn)錄因子Kaiso調(diào)控基因表達(dá)。 本研究目的旨在探討肺癌組織中p120ctn和Kaiso的表達(dá)情況及與臨床病理學(xué)參數(shù)意義、肺癌患者預(yù)后的關(guān)系。在細(xì)胞水平上,應(yīng)用shRNA干擾技術(shù)研究Kaiso的核內(nèi)功能,通過穩(wěn)定干擾和過表達(dá)p120ctn的表達(dá),分析p120ctn亞型蛋白1和3對(duì)Kaiso表達(dá)和定位的影響。運(yùn)用細(xì)胞周期同步化技術(shù)探
3、討細(xì)胞周期對(duì)Kaiso核漿分布的影響。 方法: 1、肺癌組織 原發(fā)性肺癌標(biāo)本及配對(duì)的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移癌均來自中國(guó)醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院外科1998—2005年手術(shù)切除的標(biāo)本。所有患者術(shù)前均未接受放、化療。其中部分患者保存有完整、詳實(shí)的預(yù)后資料。標(biāo)本經(jīng)4%中性甲醛固定,石蠟包埋,HE常規(guī)染色后明確診斷。其中部分癌旁肺組織(遠(yuǎn)離腫瘤至少5厘米)和淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移癌離體后立即放入液氮后—70℃冰箱保存?zhèn)溆谩?2、免疫組織化學(xué)
4、染色及結(jié)果判定 標(biāo)本用中性福爾馬林溶液固定,石蠟包埋,制成4μm切片,經(jīng)脫蠟,脫苯,水化后,采用鏈菌素抗生物素蛋白—過氧化物酶免疫組化法(S-P法)檢測(cè)Kaiso和p120ctn蛋白表達(dá)。單克隆抗體Kaiso和p120ctn4℃孵育過夜。以癌旁肺支氣管粘膜上皮細(xì)胞著色強(qiáng)度和定位為內(nèi)對(duì)照,PBS緩沖液代替一抗為陰性對(duì)照。結(jié)果判定:高倍視野(×400)下選陽(yáng)性信號(hào)最強(qiáng)區(qū)域計(jì)數(shù)200個(gè)腫瘤細(xì)胞中陽(yáng)性細(xì)胞數(shù),按Kaiso表達(dá)百分率分為以
5、下四個(gè)等級(jí):<25%為0分,26%—50%為1分,51%—75%為2分,>75%為3分。根據(jù)免疫組化染色強(qiáng)度分為三個(gè)等級(jí):淺黃色計(jì)為1分,棕黃色計(jì)為2分,黃褐色計(jì)為3分。以陽(yáng)性細(xì)胞率和染色強(qiáng)度的分值乘積作為每一例的積分,積分為0和1分者判定為陰性,積分>2為陽(yáng)性。當(dāng)Kaiso核陽(yáng)性信號(hào)≥5%時(shí)定為核陽(yáng)性表達(dá)。P120ctn正常表達(dá)的陽(yáng)性信號(hào)定位于細(xì)胞膜,表現(xiàn)為膜著色清楚、連續(xù)且陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)≥90%;膜表達(dá)下降表現(xiàn)為膜著色淡且不連續(xù),陽(yáng)性細(xì)
6、胞數(shù)<90%;而超過10%的腫瘤細(xì)胞胞漿出現(xiàn)陽(yáng)性信號(hào)定為異位表達(dá)。P120ctn的異位表達(dá)和膜表達(dá)下降統(tǒng)歸為p120ctn異常表達(dá)。 3、間接免疫熒光檢測(cè) 固定后的冰凍組織切片和細(xì)胞爬片用0.2% Triton X—100處理15分鐘,非免疫動(dòng)物血清封閉,一抗為單克隆抗體小鼠抗人Kaiso和小鼠抗人p120ctn4℃孵育過夜;二抗為異硫氰酸熒光素(FITC)標(biāo)記或羅丹明標(biāo)記(TRITC)標(biāo)記的山羊抗小鼠IgG,碘化丙啶或
7、DAPI進(jìn)行核復(fù)染。50%緩沖甘油封片,熒光顯微鏡OlympusⅨ51于波長(zhǎng)為527nm處觀察羅丹明熒光強(qiáng)度,于372nm波長(zhǎng)處觀察DAPI的熒光染色觀察并照相。陰性對(duì)照實(shí)驗(yàn):用等量的0.01mol/L PBS代替一抗。 4. Western Blot 將含80μg總蛋白的裂解產(chǎn)物進(jìn)行SDS-PAGE電泳后,轉(zhuǎn)印至PVDF膜,單克隆抗體Kaiso或p120ctn4℃孵育過夜,辣根過氧化物酶標(biāo)記二抗37℃孵育2小時(shí)后DAB
8、或ECL顯色。 5、RT-PCR 采用TrizolTM試劑提取肺癌組織或培養(yǎng)細(xì)胞的總RNA,利用RNA PCR Kit(AMV) Ver.3.0試劑盒進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。分別擴(kuò)增Kaiso、p120ctn和matrilysin,以β—actin為內(nèi)參。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳后,成像分析。 6、細(xì)胞培養(yǎng) 在37℃,含5% CO2的培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)人類肺癌細(xì)胞系BE1、SPC—A—1、LTEP—A—2和A549
9、細(xì)胞系,培養(yǎng)基分別為含10%滅活胎牛血清的RPMI1640或高糖DMEM,貼壁生長(zhǎng),每2—3天胰酶消化傳代一次。 7、質(zhì)粒構(gòu)建與轉(zhuǎn)染 shRNA干擾質(zhì)粒導(dǎo)入感受態(tài)宿主細(xì)菌E.coli中擴(kuò)增、純化,使用Arrest—InTMTransfection Reagent轉(zhuǎn)染試劑將質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)染至肺癌細(xì)胞系LTEP—A—2、SPC—A—1和BE1中,通過Western Blot和RT-PCR鑒定轉(zhuǎn)染效果。 將含有目的基因的
10、載體導(dǎo)入感受態(tài)宿主細(xì)菌DH5α中擴(kuò)增、純化,測(cè)序驗(yàn)證后,使用Lipofect2000轉(zhuǎn)染試劑將質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)染至肺癌細(xì)胞系A(chǔ)549中,并以G418篩選出陽(yáng)性細(xì)胞克隆,通過Western Blot和RT-PCR鑒定轉(zhuǎn)染效果后,挑取轉(zhuǎn)染成功的單克隆細(xì)胞在含有G418的RPMI1640或高糖DMEM培養(yǎng)液中繼續(xù)培養(yǎng)。 8、體外基質(zhì)膠侵襲實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞侵襲能力 按照BD公司說明操作,取100μl細(xì)胞懸液(5×106個(gè)/ml)滴入上室內(nèi)
11、,下室加入含有10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)液,上下室之間用孔徑為8μm的聚碳酸酯微孔濾膜分開,將小室置37℃,5%CO2條件下放置后,棄去上室內(nèi)液體,擦盡膜上Matrigel膠,100%甲醇固定30分鐘,常規(guī)蘇木素染色,光鏡下計(jì)數(shù)細(xì)胞數(shù)。 9、四甲基偶氮唑鹽(tetrazolium,MTT)法檢測(cè)細(xì)胞增殖能力 取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的肺癌細(xì)胞懸液(細(xì)胞密度3×105個(gè)/ml)分別接種于4個(gè)96孔板培養(yǎng)板,每板分6組:空白組
12、(A)(B),干擾對(duì)照組(C)、干擾組(D)、抗體抑制對(duì)照組(E)和抗體移植組(F)。培養(yǎng)第24、48、72小時(shí)分別加入MTT(5mg/ml)20μl,繼續(xù)孵育4小時(shí)后,每孔加入150μlDMSO溶解結(jié)晶,選擇波長(zhǎng)490nm,在酶聯(lián)免疫(ELISA)檢測(cè)儀上測(cè)定各孔吸光度。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。繪制細(xì)胞生長(zhǎng)曲線。 10、核漿蛋白分離 按照Thermo公司說明操作,取一定體積(100mg)的組織或者10× l06的細(xì)胞,依次加入體
13、積比為200:11:100的試劑CERⅠ,CERⅡ和NER,分別提取細(xì)胞漿蛋白和細(xì)胞核蛋白。檢測(cè)α-Tubulin和Lamin B1在兩種細(xì)胞組分中的表達(dá)以驗(yàn)證核漿蛋白分離效果。 11、免疫共沉淀 提取的蛋白中加入4μg的誘餌蛋白抗體,充分混勻后4℃孵育2小時(shí)后加入25μl Protein G Microbeads,混勻后繼續(xù)4℃孵育1小時(shí)。按照操作說明步驟,混合液過μ柱,SDS上樣緩沖液沖洗μ柱,收集免疫共沉淀產(chǎn)物。
14、 12、細(xì)胞周期同步化 G0期同步化(血清饑餓法):指數(shù)生長(zhǎng)期的肺癌細(xì)胞,培養(yǎng)至匯合密度為30%時(shí)收集細(xì)胞,1000rpm離心5分鐘,PBS洗2次后鋪板接種,換成無血清的RPMI—1640/DMEM培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)36小時(shí)后用于檢測(cè)。 S期同步化(胸苷雙阻斷法):指數(shù)生長(zhǎng)期的肺癌細(xì)胞,培養(yǎng)液中加入胸苷至終濃度2mmol/L,繼續(xù)培養(yǎng)18小時(shí)。以1000rpm離心5小時(shí),棄上清,用PBS清洗3次,去除胸苷阻滯。將
15、細(xì)胞重新懸浮成細(xì)胞懸液,接種到培養(yǎng)瓶中繼續(xù)培養(yǎng)16小時(shí)。培養(yǎng)液中再加入胸苷,使之終濃度為2mmol/L,繼續(xù)培養(yǎng)12小時(shí)。用0.25%胰蛋白酶溶液消化后,換新鮮培養(yǎng)液,1000rpm離心,預(yù)熱Hanks液清洗2次后接種入另一培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),繼續(xù)培養(yǎng)2小時(shí)后用于檢測(cè)。 13、流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞周期 收集對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞制成1×107個(gè)/ml細(xì)胞懸液。取1ml細(xì)胞懸液75%冷乙醇于4℃固定、離心后制成500μl的細(xì)胞懸液,加碘化丙啶
16、染液于4℃孵育45分鐘后上機(jī)檢測(cè),ModFitLT3.0軟件分析細(xì)胞周期。 14、統(tǒng)計(jì)分析 各組資料利用SPSS for Window13.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。P<0.05有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。 結(jié)論: 1、Kaiso在細(xì)胞漿和細(xì)胞核中的生物學(xué)作用不同。 肺癌組織中Kaiso的表達(dá)量明顯高于癌旁肺組織,Kaiso的漿陽(yáng)性表達(dá)與肺癌的分期、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移、不良預(yù)后密切相關(guān),可能是影響肺癌不良預(yù)后的獨(dú)立危險(xiǎn)因素。Ka
17、iso在細(xì)胞核內(nèi)抑制著matrilysin基因的轉(zhuǎn)錄,下調(diào)Kaiso的核表達(dá)使肺癌的增殖和侵襲能力顯著上調(diào)。 2、p120ctn和Kaiso在肺癌中協(xié)同表達(dá),p120ctn調(diào)控著Kaiso的蛋白表達(dá)量和核漿分布。 P120ctn與Kaiso在肺癌組織中協(xié)同漿表達(dá),在肺癌原發(fā)灶及淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移癌中均能檢測(cè)到Kaiso-P120ctn復(fù)合物。P120ctn亞型1和亞型3都可以影響Kaiso的蛋白表達(dá)量,但不影響Kaiso的轉(zhuǎn)錄
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