2023年全國碩士研究生考試考研英語一試題真題(含答案詳解+作文范文)_第1頁
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文檔簡介

1、目的:
  1.找出制備有良好載藥率、包封率及載生長因子微球緩釋系統(tǒng)的可行方法。
  2.研究微球緩釋系統(tǒng)釋藥特性,找出促進(jìn)種子細(xì)胞生長所需的生長因子濃度。
  3.研究載復(fù)合生長因子納米微球緩釋系統(tǒng)是否能提高細(xì)胞的增殖及分泌能力,促進(jìn)細(xì)胞外基質(zhì)重構(gòu),是否能提高種子細(xì)胞在去細(xì)胞支架的粘附能力。
  方法:
  1.大鼠骨髓間質(zhì)干細(xì)胞的分離、培養(yǎng)及表型鑒定:采用percoll密度梯度離心法對SD大鼠骨髓進(jìn)行分

2、離培養(yǎng),應(yīng)用流式細(xì)胞儀測定MSCs細(xì)胞周期、及表面抗原CD34、CD44、CD45表型鑒定。
  2.不同生長因子對MSC增殖、粘附功能影響研究:對MSCs分別加入含濃度為0、3.125、6.25、12.5、25、50、100、200ng?mL-1的bFGF、PDGF或bFGF+PDGF復(fù)合生長因子培養(yǎng)基,置于37℃、5%CO2及飽和濕度條件下誘導(dǎo)培養(yǎng)24、48、96、144h。采用CCK-8測定種子細(xì)胞增殖情況,計數(shù)法測定細(xì)胞粘

3、附情況,用流式細(xì)胞儀測定細(xì)胞周期和凋亡率,檢測MSCsⅠ、Ⅲ型膠原分泌情況。最終確定PDGF-BB和bFGF兩者之間的最佳濃度比例。
  3.微球緩釋系統(tǒng)的制備:采用改良的乳液聚合法制得一系列粒徑DEX-GMANPs緩釋系統(tǒng)(DG-NPs),并通過對反應(yīng)條件的優(yōu)選尋找最佳制備微球的反應(yīng)條件,選取能達(dá)到所需載藥量及緩釋作用的微球粒徑。
  4.載復(fù)合生長因子微球緩釋系統(tǒng)對MSC增殖、粘附功能的影響研究:分為bFGF緩釋微球組、

4、PDGF緩釋微球組、bFGF+PDGF復(fù)合緩釋微球組分別加入0、3.125、6.25、12.5、25、50、100、200ng?mL-1的bFGF緩釋微球、PDGF緩釋微球、bFGF+PDGF復(fù)合緩釋微球至第三代種子細(xì)胞,37℃、5%CO2及飽和濕度條件下誘導(dǎo)培養(yǎng)24、48、96、144h,與相應(yīng)的bFGF、PDGF、bFGF+PDGF及空白組對照,采用計數(shù)法測定細(xì)胞粘附情況,CCK-8測定種子細(xì)胞增殖情況,Westonblot檢測MS

5、CsⅠ、Ⅲ型膠原分泌情況。流式細(xì)胞儀測定細(xì)胞表面抗原特性。
  結(jié)果:
  1.于大鼠股骨中取得的骨髓間質(zhì)干細(xì)胞經(jīng)三次傳代培養(yǎng),形態(tài)良好,數(shù)量可達(dá)到107細(xì)胞數(shù)量級,能滿足組織工程種子細(xì)胞的需求。
  2.發(fā)現(xiàn)bFGF和PDGF對MSCs的增殖促進(jìn)作用明顯,24h內(nèi)3.125ng·mL-1bFGF(?值:0.18±0.01)已與空白組(?值:0.12±0.02)產(chǎn)生顯著差異(p<0.05),且在濃度低于100ng?mL

6、-1呈明顯濃度依賴趨勢。100ng·mL-1的bFGF和PDGF對MSCs的增殖促進(jìn)作用最強(qiáng)。同樣對于細(xì)胞黏附bFGF和PDGF也有明顯的促進(jìn)作用,兩者也均呈明顯濃度依賴趨勢。與同劑量單純bFGF、PDGF相比bFGF+PDGF復(fù)合生長因子對于MSCs的增殖和粘附均有更顯著的促進(jìn)作用(p均<0.01)。
  3.制備的微球緩釋系統(tǒng),乳化劑與投藥量比為1:25,攪拌速率為200rpm時,改良乳液聚合法制備緩釋凝膠微球,微球圓整表面光

7、滑,大小均勻,微球凍干粉為淡白色疏松粉末,包封率88.2%,初始24h突釋達(dá)60%,之后持續(xù)緩釋效果達(dá)30d,且對細(xì)胞無毒副作用。
  4.bFGF緩釋系微球與單純bFGF組對比:24h濃度25ng·mL-1時對細(xì)胞增殖的促進(jìn)作用bFGF微球組(0.17±0.01),bFGF組(0.19±0.02)已與空白微球組(0.13±0.02)產(chǎn)生顯著差異(p<0.05);48h內(nèi),bFGF微球組對MSCs增殖促進(jìn)作用與bFGF組差別無統(tǒng)計

8、意義(p>0.05);96h劑量25ng·mL-1以上時,bFGF微球組對MSCs增殖的促進(jìn)作用顯著高于單純bFGF組(p<0.05)。
  5.PDGF緩釋系微球與單純PDGF對MSCs增殖的對比:培養(yǎng)24h,濃度6.25ng·mL-1時,PDGF微球組(0.15±0.01),單純PDGF組(0.16±0.01)已與空白微球組(0.13±0.02)對細(xì)胞增殖的促進(jìn)作用產(chǎn)生顯著差異(p<0.05);48h內(nèi)PDGF微球組對MSCs

9、增殖促進(jìn)作用與單純PDGF無顯著差異(p>0.05);96h劑量6.25ng·mL-1以上時,PDGF微球組對MSCs增殖的促進(jìn)作用顯著高于單純PDGF組(p<0.05)。
  6.bFGF+PDGF緩釋微球促M(fèi)SCs增殖對比:培養(yǎng)144h后,50ng·mL-1以上濃度bFGF+PDGF緩釋微球組對MSCs的增殖促進(jìn)作用明顯高于非緩釋bFGF+PDGF復(fù)合因子組(p<0.05)。24、48h,50和100ng·mL-1時,bFGF

10、+PDGF復(fù)合緩釋微球組對細(xì)胞增殖的促進(jìn)明顯高于bFGF緩釋微球組(p<0.05),24h、12.5ng·mL-1至100ng·mL-1及48h以上各濃度以及96h和144h低于200ng·mL-1濃度時,bFGF+PDGF緩釋微球組對MSCs的增殖促進(jìn)效果顯著優(yōu)于單純PDGF緩釋微球組(p<0.05)。
  7.緩釋微球與非緩釋微球組對24h細(xì)胞粘附功能的影響:在濃度6.25ng·mL-1至100ng·mL-1之間,對于細(xì)胞的粘

11、附均有促進(jìn)作用(p<0.05),但緩釋微球與非緩釋微球組對比無顯著差異(p>0.05)。bFGF+PDGF復(fù)合緩釋微球比單純PDGF和單純的bFGF緩釋微球相比對細(xì)胞粘附的影響有顯著差異。bFGF+PDGF復(fù)合緩釋微球組在各時間點(diǎn)對細(xì)胞粘附的促進(jìn)效果顯著優(yōu)于同劑量單純生長因子微球組(p<0.05)。
  8.各生長因子組I型III型膠原分泌的影響:bFGF+PDGF復(fù)合緩釋微球組I型膠原(26.79±2.58)III型膠原(26.

12、54±1.81),bFGF+PDGF復(fù)合組I型膠原(13.18±2.12),III型膠原(16.82±1.56)均顯著高于相對應(yīng)的空白微球?qū)φ战MI型膠原(4.01±0.64)III,型膠原(4.76±0.56)和空白對照組I型膠原(3.16±0.55),III型膠原(4.72±0.36)(p<0.01)。同時bFGF+PDGF復(fù)合緩釋微球組的I型膠原、III型膠原分泌值,也顯著高于單純bFGF+PDGF復(fù)合組(p<0.05)。
 

13、 結(jié)論:
  1.本研究制得微球表面光滑圓整,球體大小均勻,我們采取200rpm攪拌速率獲得的微球,平均粒徑為20-40μm。并且具有滿意的緩釋作用及載藥量。早期的突釋可以使藥物快速達(dá)到所需峰值濃度,且微球?qū)ιL因子的保護(hù)性良好,可使生長因子長期持續(xù)作用于細(xì)胞。
  2.找到了生長因子bFGF、PDGF與MSCs的增殖與粘附的量效關(guān)系,可在組織工程心臟瓣膜的構(gòu)建過程中根據(jù)需要加入復(fù)合生長因子DG-NPs,使種子細(xì)胞維持分化能

14、力的時期延長,增殖能力提升,I型膠原、III型膠原的泌合成顯著增加,細(xì)胞粘附力增強(qiáng)。
  3.bFGF和PDGF緩釋微球?qū)SCs的增值和粘附均有促進(jìn)作用,96h濃度25ng·mL-1以上時bFGF微球組對MSCs增殖的促進(jìn)作用高于bFGF組,96h劑量6.25ng·mL-1以上濃度PDGF微球組對MSCs增殖的促進(jìn)作用高于單純PDGF組。
  4.復(fù)合生長因子緩釋微球培養(yǎng)144h后、50ng·mL-1以上濃度時,bFGF+

15、PDGF緩釋微球組對MSCs的增殖促進(jìn)作用明顯高于非緩釋bFGF+PDGF復(fù)合因子組。同時間各濃度,bFGF+PDGF緩釋微球組對MSCs的增殖促進(jìn)效果均顯著優(yōu)于bFGF緩釋微球;24h、12.5ng·mL-1濃度以上,以及48h以上各濃度bFGF+PDGF緩釋微球組對MSCs的增殖促進(jìn)效果顯著優(yōu)于單純PDGF緩釋微球組。
  5.bFGF+PDGF復(fù)合生長因子微球與單純PDGF和單純的bFGF緩釋微球相比對細(xì)胞粘附的影響有顯著差

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