實驗28 植物體內可溶性蛋白質含量的測定

1、實驗28植物體內可溶性蛋白質含量的測定植物體內的可溶性蛋白質大多數(shù)是參與各種代謝的酶類，測其含量是了解植物體總代謝的一個重要指標。在研究每一種酶的作用時，常以比活（酶活力單位／mg蛋白）表示酶活力大小及酶制劑純度。因此，測定植物體內可溶性蛋白質是研究酶活的一個重要項目。常用測定方法有Lowry法和考馬斯亮藍G250染料結合法。本實驗將分別介紹這兩種方法。一、考馬斯亮藍法【原理】考馬斯亮藍G250測定蛋白質含量屬于染料結合法的一種?？捡R斯

2、亮藍G250在游離態(tài)下呈紅色，當它與蛋白質的疏水區(qū)結合后變?yōu)榍嗌罢咦畲蠊馕赵?65nm，后者在595nm。在一定蛋白質濃度范圍內（0～100μgml），蛋白質－色素結合物在595nm波長下的光吸收與蛋白質含量成正比。故可用于蛋白質的定量測定。蛋白質與考馬斯亮藍G250結合在2min左右的時間內達到平衡，完成反應十分迅速，其結合物在室溫下1h內保持穩(wěn)定。該反應非常靈敏，可測微克級蛋白質含量，所以是一種比較好的蛋白質定量法?！緝x器與用

3、具】分光光度計，10ml量筒1支；研體；10ml容量瓶1支；1ml刻度吸管3支；10ml具塞刻度試管14支。【試劑】（1）牛血清白蛋白配成1000μgml和100μgml；（2）考馬斯亮藍G250：稱取100mg考馬斯亮藍G250溶于50ml90%乙醇中，加入85%（WV）磷酸100ml，最后用蒸餾水定容至1000ml。此溶液在常溫下可放置一個月；（3）90%乙醇；（4）磷酸（85%，WV）?！痉椒ā?.標準曲線的繪制（1）0～100μ

4、gml標準曲線的制作取6支試管，按表281數(shù)據(jù)配制0～100μgml血清白蛋白液各1ml。準確吸取所配各管溶液0.1ml，分別放入10ml具塞試管中，加入5ml考馬斯亮藍G250試劑，蓋塞，反轉混合數(shù)次，放置2min后，在595nm下比色，繪制標準曲線。表281配制0～100μgml血清白蛋白液管號123456100μgml牛血清蛋白量(ml)蒸餾水量(ml)蛋白質含量(mg)01.000.20.80.020.40.60.040.60.

5、40.060.80.20.081.000.10（2）0～1000μgml標準曲線的制作另取6支試管，按表282數(shù)據(jù)配制0～1000μgml牛血清白蛋白溶液各1ml。與步驟（1）操作相同，繪出0～1000μgml的標準曲線。表282配制0～1000μgml血清蛋白血液管號7891011121000μgml牛血清白蛋白（ml）蒸餾水量(ml)蛋白質含量(mg)01.000.20.80.20.40.60.40.60.40.60.80.20.8

6、1.001.02.樣品提取液中蛋白質濃度的測定吸取樣品提取液0.1ml（樣品提取見各酶活測定），放入具塞刻度試管中（設兩個重復管），加入5ml考馬斯亮藍G250試劑，充分混合，放置2min后在595nm下比色，記錄吸光度值，通過標準曲線查得蛋白質含量。3.結果計算樣品蛋白質含量（mgg鮮重）=WaVC?式中C－查標準曲線所得每管蛋白質含量（mg）；V－提取液總體積（ml）；a－測定所取提取液體積（ml）；W－取樣量（g）。二、LOWRY

7、法【原理】Lowry法是雙縮脲法和福林酚法的結合與發(fā)展，其原理是：蛋白質溶液用堿性銅溶液處理，形成銅蛋白質的絡合鹽，再加入酚試劑后，除使肽鏈中酪氨酸、色氨酸和半胱氨酸等顯色外，還使雙縮脲法中肽鍵、堿性銅的顯色效果更強烈。因此，Lowry法的顯色效果比單獨使用酚試劑強烈3～15倍，為雙縮脲法100倍。由于肽鍵顯色效果增強，從而減小了因蛋白質種類引起的偏差。Lowry法的試劑由兩部分組成，試劑甲相當于雙縮脲試劑（堿性銅溶液），可與蛋白質中的