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文檔簡介
1、小電導-Ca2+-激活K+通道(small-conductance Ca2+-activated K+channels,SK,KCa2)幾乎存在于所有可興奮細胞的胞漿膜上,依賴于細胞內的Ca2+進行激活。SK通道家族由SK1、SK2、SK3以及一個在結構和功能上與SK通道相似的中電導-Ca2+-激活K+通道(intermediate-conductance Ca2+-activated K+channels,IK或稱SK4)組成。SK1
2、、SK2和SK3三個亞型在人類、小鼠和大鼠心肌細胞中均有表達,參與心肌細胞動作電位復極化的構成。研究顯示SK1和SK2主要表達在心房,而敲除SK2通道的動物出現(xiàn)心房細胞復極化延長,增加房顫和房撲等快速性心律失常的易感性。因此,SK2通道可能與室上性快速性心律失常有關,可作為室上性快速性心律失常的治療靶點,但它的調控機制目前還不明確。
引起SK2通道開放的細胞內Ca2+信號來源有兩條途徑:位于細胞膜上的電壓-門控Ca2+通道(v
3、oltage-gated Ca2+channels,VGCCs)及內/肌質網(wǎng)(endo/sarcoplasmic reticulum,ER/SR)膜上RyRs(ryanodine receptors)敏感的Ca2+釋放通道。已有研究報道指出心肌細胞膜的Cav1.3L型Ca2+通道通過α-actinin與SK2通道進行耦聯(lián),實現(xiàn)對SK2通道的調控,這提示SK2通道可能不是直接和調控性的Ca2+通道有生理性相互作用。我們實驗室前期實驗證據(jù)已
4、顯示心肌細胞膜表面的SK2通道與SR RyR2受體通道有功能性耦聯(lián),但它們二者之間耦聯(lián)的中間分子并不清楚。
本研究通過質譜分析和生物信息學的方法篩選心肌組織中與JP2相互作用的蛋白質,采用心肌組織和轉染HEK293細胞進行免疫共沉淀和GST pull-down實驗來驗證JP2與SK2通道、JP2與RyR2之間的相互作用,進一步制備不同片段GST-JP2原核表達質粒來驗證JP2與SK2通道和RyR2發(fā)生相互作用的結構域,并通過功
5、能性實驗檢測JP2敲減后對鈣瞬變(calcium transients)的影響,以及JP2敲減后心肌鈣相關蛋白的表達。
研究方法:
1.采用健康成年C57BL/6小鼠,體重20-25g,雌雄不拘。
2.心肌肌質網(wǎng)小泡膜蛋白的分離和檢測:用差速離心的方法提取成年C57BL/6小鼠心臟肌質網(wǎng)小泡的膜蛋白。并用Western blot方法檢測膜蛋白中SK2、JP2和RyR2的蛋白,用心肌組織蛋白做陽性對照。
6、> 3.質譜分析:心肌肌質網(wǎng)小泡膜蛋白裂解液中加入JP2抗體或鼠源無關的抗-IgG抗體,再用proteinG-Sepharose捕獲制備免疫共沉淀復合物,進行電泳后,考馬斯亮藍染色,選擇有差異的目標蛋白條帶作為質譜分析樣品,送北京大學醫(yī)學部進行質譜分析。
4.生物信息學:根據(jù)文獻將蛋白質篩選,用geneontology網(wǎng)站進行分類,并在String網(wǎng)站上查出它們之間的相互作用。
5.Western blot鑒定:將
7、制備的免疫共沉淀復合物進一步用特異性SK2和RyR2抗體進行檢測。
6.構建原核表達載體:使用BamHⅠ和NotⅠ雙酶切原核表達載體pGEX-4T-1,將JP2全長、氨基端片段JP2-N1(1-253)和JP2-N2(216-350)、羧基端片段JP2-C(340-696)插入,構建融合基因pGEX-4T-1-GST-JP2、pGEX-4T-1-GST-JP2-N1(aa1-253)、pGEX-4T-1-GST-JP2-N2(
8、aa216-350)和pGEX-4T-1-GST-JP2-C(aa340-696)。并用雙酶切和測序方法鑒定構建的重組質粒。
7.GST融合蛋白的原核表達和純化:將已鑒定的GST、GST-JP2以及GST-JP2不同片段重組質粒分別轉化宿主菌E.Coli BL21,用IPTG26℃過夜誘導表達靶蛋白,并用GST.BindTM樹脂層析柱純化融合蛋白。
8.構建pSK2-IRES-EGFP和pJP2-pCDNA-EGFP
9、質粒,共轉染HEK293細胞:以pCMV6-entry-SK2和pCDNA3.1-JP2為模板,制備pSK2-IRES-EGFP和pJP2-pCDNA-EGFP質粒,用雙酶切和測序方法鑒定構建的質粒。按照LipofectamineTM2000說明書轉染質粒。
9.GST pull-down分析:將結合了GST融合蛋白的層析柱中加入心臟裂解液或HEK293細胞裂解液,過夜孵育后用谷胱甘肽elution buffer洗脫,并用SK
10、2或RyR2抗體進行檢測。
10.Co-IP法檢測體外JP2和SK2相互作用:將共轉染SK2和JP質粒的HEK293細胞裂解液與抗體過夜孵育,再用proteinG-Sepharose制備免疫共沉淀復合物;再分別用抗SK2和抗JP2抗體進行檢測。
11.尾靜脈注射腺病毒:給健康成年C57BL/6小鼠尾靜脈注射總量為1×109PFU的攜帶陰性對照siRNA(Ad-NC)或JP2-siRNA(Ad-siJP2)的腺病毒。注
11、射后7天分離成年小鼠心肌細胞。
12Western blot的方法測定注射腺病毒成年小鼠心臟JP2蛋白表達,并檢測對SK2通道蛋白表達的影響。
13.鈣瞬變的測定:將Ad-NC和Ad-siJP2組成年小鼠心肌細胞懸液進行梯度復鈣,并加入終濃度為2μM的Fura-2/AM,用1HZ場刺激誘發(fā)鈣瞬變,采用IonOptix心肌細胞收縮及離子濃度同步測量系統(tǒng)測量鈣瞬變,數(shù)據(jù)采用美國IonOptix公司的IonWizard6.
12、6軟件進行分析。
14.Western blot的方法測定RyR2、Cav.1.2、NCX、SERCA2鈣處理相關蛋白的表達。
15.統(tǒng)計學分析:所有數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準誤表示,用SPSS11.0統(tǒng)計學軟件進行分析。以配對t檢驗或單因素方差分析(one-way AN OVA)進行統(tǒng)計學處理。統(tǒng)計分析以P<0.05為有顯著性差異。
實驗結果:
1.Western blot檢測顯示肌質網(wǎng)小泡膜蛋白中有SK
13、2、JP2和RyR2三種蛋白的表達。
2.在心肌肌質網(wǎng)小泡膜蛋白中加入JP2抗體(免疫共沉淀實驗組)或鼠源無關的抗-IgG抗體(陰性對照組)制備質譜分析樣品,電泳后考馬斯亮藍染色,觀察對照組和實驗組的蛋白質泳帶,選出13條差異目標條帶。質譜分析后得到35013個與JP2可能有相互作用的蛋白質,最終篩選出90個相關的蛋白質,其中包括SK2和RyR2蛋白。通過信息分析學進一步對蛋白質進行分類,并測定它們之間的相互作用。
14、3.String網(wǎng)站預測結果顯示JP2和RyR2兩者的直系同源蛋白可以在其他物種中共表達,可以預測它們之間可能存在相互作用;由于目前只能同源模建出小鼠SK2的CaM區(qū)(序列為655-785),不能預測SK2和JP2之間是否有相互作用;但通過Western blot的方法用特異性SK2和RyR2抗體檢測到肌質網(wǎng)小泡裂解液中JP2可以沉淀SK2和RyR2蛋白。
4.GST-JP2融合蛋白可以pull-down心肌組織裂解液中的SK
15、2,提示GST-JP2與心肌中SK2有相互作用,并且這種相互作用主要發(fā)生在JP2氨基末端的MORN區(qū),尤其是GST-JP2-N1(aa1-253)片段作用明顯,而GST-JP2的羧基末端GST-JP2-C片段(aa340-696)可以和心肌組織裂解液中的RyR2結合;體外實驗結果顯示GST-JP2的MORN1區(qū)1-253片段可以和HEK293細胞裂解液中的SK2蛋白結合。
5.將HEK293細胞共轉染SK2和JP2質粒,用特異
16、性JP2或SK2抗體孵育細胞蛋白裂解液進行Co-IP實驗,結果顯示SK2可以共沉淀JP2,JP2可以和SK2結合,提示體外JP2和SK2之間可能有相互作用。
6.成年小鼠尾靜脈注射陰性對照siRNA或JP2-siRNA的腺病毒,Western blot結果顯示,與空白對照組(Ctrl-NT)和陰性對照組(Ad-NC)相比,Ad-siJP2組JP2表達減少到了47%和48%,而SK2通道蛋白表達無明顯變化。
7.成年小
17、鼠心肌細胞JP2敲減后,用IonOptix心肌細胞收縮及離子濃度同步測量系統(tǒng)測量鈣瞬變,與Ad-NC相比,Ad-siJP2組鈣瞬變的幅度顯著減少,鈣瞬變到達峰值50%的時間卻顯著增加,而細胞內靜息Ca2+水平和鈣瞬變衰減50%的時間沒有顯著變化。使用Caffine測量RyR2依賴性肌質網(wǎng)Ca2+儲存水平,與陰性對照組相比,鈣瞬變的幅度亦顯著減少。因此,敲減成年小鼠心肌JP2的表達,會減少心肌肌質網(wǎng)Ca2+的釋放。
8.用Wes
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