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文檔簡介
1、目的:通過多種實驗室檢測方法觀察木犀草素對鼠膀胱腫瘤T739細胞的影響并探討其作用機制。如MTT法分析木犀草素對T739細胞的生長抑制作用和半數(shù)抑制率IC50。Hoechst33258核染色、Caspase-3細胞凋亡術(shù),流式細胞術(shù)檢測細胞周期和凋亡,Western blot分析木犀草素引起的周期相關(guān)蛋白和凋亡相關(guān)蛋白的變化并推測存在的分子機制。
方法:1.細胞培養(yǎng)膀胱癌細胞株T739細胞在37℃,5% CO2條件下,用含10
2、%胎牛血清、100 U/mL青霉素和100 mg/L鏈霉素的RPMI-1640培養(yǎng)基傳代培養(yǎng)取對數(shù)生長期的細胞用于以下試驗。2.細胞形態(tài)觀察將0.1%DMSO(作為陰性對照組)、不同濃度的木犀草素(20,40,60,80,100μmol/L)、順鉑10μg/ml(作為陽性對照組)分別加到處于對數(shù)生長期的T739細胞中于第6,24,48h觀察細胞形態(tài)變化,倒置顯微鏡拍攝(200倍)。3.木犀草素對T739細胞的增殖抑制作用取對數(shù)生長期的T
3、739細胞于96孔板中,接種密度約為每孔1×104個細胞,每組設(shè)置3個復(fù)孔。饑餓過夜后,分別加入0.1%DMSO、20,40,60,80,100μmol/L木犀草素、順鉑10μg/ml,繼續(xù)培養(yǎng)6,24,48h。培養(yǎng)結(jié)束后,每孔加入5g/L的MTT10μL后于37℃繼續(xù)溫育4h。吸除上清液,每孔加入100μLDMSO,室溫震蕩溶解結(jié)晶10 min,于570nm(吸收波長)和630nm(參比波長)處測吸光度。計算細胞存活率=(A實驗組57
4、0-A實驗組630)/(A對照組570-A對照組630)×100%。4.Hoechst33258染色用Hoechst33258對細胞核進行染色,可顯示核的變化和凋亡小體。木犀草素處理結(jié)束后,細胞用PBS洗2遍,4%甲醛4℃固定30 min。吸除固定液,PBS洗2遍,然后用Hoechst33258染色。10min后,PBS清洗細胞,Zeiss倒置熒光顯微鏡于340nm處觀察和拍攝細胞。5.Caspase-3活性檢測對照組與感染組細胞培養(yǎng)于
5、96孔板內(nèi),調(diào)整各孔培養(yǎng)液為100μL,分別于培養(yǎng)24,48h檢測Caspase-3活性.參照Caspase—Glo(r)3/7 Assay說明書進行檢測,化學(xué)光度計VarioskanFlash檢測各孔液體吸光度,數(shù)據(jù)用Skanh Software(version2.4)軟件分析.6.細胞周期分析對照組和實驗組細胞經(jīng)胰酶消化后,PBS洗2遍,70%乙醇,4℃固定過夜。PBS清洗固定細胞,然后加入1mL含50mg/LPI和1g/LRNas
6、e的PBS,37℃溫育30min。流式細胞儀測定DNA含量和細胞周期分布。CELLQuest軟件分析數(shù)據(jù)。7.Westernblotting分析對數(shù)生長期的T739細胞饑餓12h后,用不同濃度的木犀草素(20,40,60,80,100μmol/L)處理24h,冰上裂解細胞提取全蛋白。Nanodrop1000檢測蛋白濃度,取相同蛋白量跑SDS-PAGE,濕轉(zhuǎn)至PVDF膜上。1%BSA封閉2h,一抗孵育2h,二抗孵育1h后,ECL曝光顯影。
7、相機拍攝X膠片保存結(jié)果。
結(jié)果:木犀草素對T739細胞有顯著的生長抑制作用,48h的IC50為54.9μmol/L,流式細胞術(shù)檢測細胞周期發(fā)現(xiàn)T739細胞經(jīng)木犀草素處理后主要阻滯在G1期。Hoechst33258核染色,Caspase-3活性檢測發(fā)現(xiàn)木犀草素處理組細胞凋亡率明顯高于未處理組。Western blot發(fā)現(xiàn)木犀草素可促進JNK的磷酸化。
結(jié)論:木犀草素對膀胱腫瘤細胞T739的作用表現(xiàn)為:木犀草素對T739
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