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文檔簡介
1、大腸桿菌的遺傳系統(tǒng)操作簡便,遺傳背景清晰,技術(shù)手段成熟,是目前較常用的蛋白表達(dá)菌株,多用于重組蛋白及藥物蛋白的生產(chǎn)。但是在實際應(yīng)用中,除了缺少翻譯后的修飾系統(tǒng)外,大腸桿菌在表達(dá)異源蛋白時會由于積累大量錯誤折疊的目的蛋白,形成難以復(fù)性的包涵體結(jié)構(gòu)。為了解決這個問題,研究人員提出了一系列的解決方法,如使用不同的啟動子調(diào)控蛋白的表達(dá)水平、共表達(dá)分子伴侶、降低培養(yǎng)溫度或者將目的蛋白以融合蛋白的形式分泌到菌體周質(zhì)空間或胞外表達(dá)。
其中,
2、融合蛋白的分泌表達(dá)具有很多優(yōu)勢,例如簡化了下游純化程序,避免了蛋白酶的降解,周質(zhì)空間的環(huán)境利于蛋白質(zhì)的正確折疊,并且胞外積累目的蛋白可以減少對菌體代謝及生長的抑制作用等。在生物質(zhì)能源轉(zhuǎn)化方面,由于纖維素類的大分子底物無法直接被大腸桿菌菌體轉(zhuǎn)運至胞內(nèi)分解利用,重組酶的胞外分泌表達(dá)也是成功的關(guān)鍵因素。
但是,在革蘭氏陰性菌中蛋白質(zhì)的分泌需要穿過兩層膜結(jié)構(gòu)。因此,大腸桿菌在實驗室培養(yǎng)條件下并不具有很強的分泌能力。融合載體蛋白的選擇不
3、僅決定了目的蛋白的轉(zhuǎn)運位置,也影響到了目的蛋白的最終分泌量。目前較常用的融合蛋白載體主要有兩類:1)信號肽序列,可以將目的蛋白特異性的轉(zhuǎn)運至周質(zhì)空間,如Sec途徑信號肽及TAT途徑信號肽序列;2)大腸桿菌中過表達(dá)檢測到的可分泌蛋白,一般可以通過某一未知的外膜途徑將目的蛋白攜帶分泌至胞外,如內(nèi)源性蛋白OsmY,YebF等。
本文利用之前研究中所發(fā)現(xiàn)的一個于芽孢桿菌的纖維素酶催化結(jié)構(gòu)域(Cel-CD),在大腸桿菌中過表達(dá)時可以被高
4、效的分泌至胞外,具有作為融合載體蛋白的應(yīng)用前景。所以選定Cel-CD作為本研究的目標(biāo)蛋白驗證其在融合蛋白分泌表達(dá)方面的應(yīng)用,并通過進(jìn)一步對Cel-CD在大腸桿菌中的分泌機制的檢測確定了Cel-CD的N端氨基酸對于其可溶性表達(dá)及分泌的作用。隨后,利用Cel-CD分泌表達(dá)融合蛋白的特性及其自身的纖維素內(nèi)切酶活性構(gòu)建了可將纖維素類物質(zhì)轉(zhuǎn)化為PHB的細(xì)胞工廠。
一、Cel-CD高效分泌表達(dá)的機理研究
由于在前期實驗中已經(jīng)驗證
5、Cel-CD的分泌是經(jīng)過周質(zhì)空間的兩步法過程,并且是不依賴于自身原始信號肽序列的。Cel-CD自身序列的N端20個氨基酸同時起到了穿內(nèi)膜及外膜分泌的信號肽作用。
通過前期的氯霉素抑制SecA蛋白活性實驗以及本章節(jié)利用N20融合GFP蛋白的熒光實驗檢測,確認(rèn)Cel-CD在大腸桿菌中是通過SecB依賴的Sec途徑穿內(nèi)膜到達(dá)大腸桿菌的周質(zhì)空間。而大腸桿菌外膜上存在的兩步法分泌孔道主要有二型分泌系統(tǒng)(T2SS),五型分泌系統(tǒng)(T5SS
6、)及外膜蛋白(OMPs)。通過敲除E.coli BL21(DE3)菌株相關(guān)蛋白的基因后檢測Cel-CD的胞外積累,發(fā)現(xiàn)Cel-CD的分泌并沒有受到抑制。因此,推斷Cel-CD在大腸桿菌中通過某一未知的途徑分泌到胞外。
由于在對Cel-CD序列分析時,發(fā)現(xiàn)其不具有各型分泌系統(tǒng)的信號肽序列性質(zhì),也沒有相關(guān)的信號肽酶酶切位點。將N20與其他常用的Sec途徑信號肽進(jìn)行序列比較,發(fā)現(xiàn)N20的n-region帶有負(fù)電荷,整個N20的二級結(jié)
7、構(gòu)預(yù)測顯示為無規(guī)則卷曲并且具有明顯的親水性及極性,并不具有傳統(tǒng)信號肽的n-region、h-region及c-region的特征。
為了檢測N20序列上對Cel-CD分泌起關(guān)鍵作用的氨基酸位點,利用隨機誘變試劑盒對N20序列進(jìn)行隨機誘變,檢測突變株胞外分泌量的變化。由于大腸桿菌屬于革蘭氏陰性菌,具有雙層膜結(jié)構(gòu),誘變株的分泌量變化既受穿內(nèi)膜效率變化的影響也受穿外膜效率變化的影響。誘變結(jié)果顯示,N20氨基酸序列疏水性提高及二級結(jié)構(gòu)
8、的改變(生成α-螺旋)都會引起穿內(nèi)膜分泌量的提高,但外膜分泌受到一定程度的抑制。通過與其他可分泌蛋白的N端的替換實驗也進(jìn)一步驗證了上述結(jié)論。以上結(jié)果說明,N20的分泌信號肽作用是折中了內(nèi)膜及外膜分泌條件的結(jié)果。
二、Cel-CD作為融合蛋白的應(yīng)用
在章節(jié)中,以Cel-CD為目標(biāo)蛋白檢測其在大腸桿菌中的應(yīng)用。首先構(gòu)建了Cel-CD的表達(dá)載體,發(fā)酵檢測其在大腸桿菌中的分泌。通過DNS法檢測胞外Cel-CD酶活,證明分泌到
9、胞外的Cel-CD具有纖維素內(nèi)切酶酶活。并通過電鏡檢測,證明表達(dá)菌體細(xì)胞膜完整,排除了菌體裂解對胞外Cel-CD積累的影響。也排除了Cel-CD的酶活對菌體細(xì)胞膜通透性造成的影響。
前期通過N端的缺失實驗,已經(jīng)驗證了Cel-CD的N端20個氨基酸對于其胞內(nèi)可溶性表達(dá)及分泌起到了重要作用。在本章節(jié)中,進(jìn)一步通過N端20個氨基酸殘基與PelB的替代實驗,證明了N端20個氨基酸同時起到了穿內(nèi)膜及外膜分泌的信號肽作用。
隨后
10、,選取了5組不同來源的蛋白質(zhì)與Cel-CD及N20融合表達(dá),以驗證Cel-CD及N20是否具有攜帶底物蛋白可溶性表達(dá)及分泌的能力。通過對各發(fā)酵組上清的檢測,發(fā)現(xiàn)Cel-CD與底物蛋白的融合可以有效的提高其在大腸桿菌中的可溶性表達(dá),并可以將5組目的蛋白全部攜帶分泌至胞外,但是分泌效率受底物蛋白分子量的影響較大。而N20融合5組不同來源的底物蛋白后,對其可溶性的提高影響并不明顯,但是在可溶性表達(dá)的基礎(chǔ)上,均可以將底物蛋白融合攜帶至胞外。進(jìn)一
11、步檢測了融合蛋白表達(dá)菌株的生長狀態(tài),與對照組相比,Cel-CD及N20融合蛋白對于菌體生長并沒有明顯的影響。結(jié)合以上實驗結(jié)果,認(rèn)為Cel-CD及N20均具有在大腸桿菌中作為載體蛋白分泌表達(dá)的能力,但適用范圍不同。
為了進(jìn)一步增加融合蛋白的可溶性及分泌效率,嘗試對培養(yǎng)基以及N端信號肽拷貝數(shù)做了優(yōu)化。文獻(xiàn)報道,TB培養(yǎng)基營養(yǎng)豐富并富含磷酸鹽緩沖體系。使用TB培養(yǎng)基代替LB發(fā)酵檢測N20融合蛋白的可溶性表達(dá)及分泌。結(jié)果顯示,TB培養(yǎng)
12、基針對原本就可溶的N20融合蛋白的可溶性表達(dá)具有促進(jìn)作用,并可以進(jìn)一步增加其分泌量。但對于不可溶的N20融合蛋白并沒有顯著作用。結(jié)果進(jìn)一步說明了N20融合對于底物蛋白可溶性并沒有顯著的促進(jìn)作用,但可以較高效的將目的蛋白攜帶分泌至胞外。
由于N20具有穿內(nèi)外膜信號臺作用,為了提高信號強度,在N20序列的N端又增加了PelB信號肽序列以增加N端的信號肽序列數(shù)。選取了與N20后僅胞內(nèi)可溶性表達(dá)的堿性磷酸酶作為底物蛋白進(jìn)行發(fā)酵檢測。實
13、驗結(jié)果顯示,添加了pelB信號肽的實驗組可以通過周質(zhì)空間被進(jìn)一步分泌至胞外。因此,認(rèn)為增加N端信號肽數(shù)目對于N20融合蛋白的分泌能力具有較好的促進(jìn)作用,但其適用范圍還需要進(jìn)一步的試驗證明。
三、Cel-CD作為雙功能蛋白的應(yīng)用
在前期的實驗中,已經(jīng)驗證分泌到胞外的Cel-CD具有較好的纖維素內(nèi)切酶活性,并且具有攜帶其他目的蛋白分泌到胞外的能力。利用Cel-CD作為融合載體蛋白,選取了來源于嗜熱裂胞菌的β-葡聚糖苷酶T
14、fu0937與其融合表達(dá)。在大腸桿菌中,融合蛋白Cel-Tfu0937可以被高效的分泌至胞外。通過酶活檢測融合蛋白的胞外活性,發(fā)現(xiàn)既有纖維素內(nèi)切酶活性也具有β-葡聚糖苷酶活性。因此具有構(gòu)建大腸桿菌纖維素細(xì)胞工廠的潛力。
PHB是一類可以被生物降解的聚酯,因此被廣泛的應(yīng)用于各個領(lǐng)域。在融合蛋白表達(dá)菌株中引入一條PHB合成途徑——包含有乙酰乙酯輔酶A、β-酮硫酶以及PHB合酶的質(zhì)粒,作為纖維素發(fā)酵利用的驗證產(chǎn)物。選取了纖維素類物質(zhì)
15、CMC作為發(fā)酵底物,在不添加葡萄糖的培養(yǎng)基內(nèi)發(fā)酵培養(yǎng),收集菌體檢測到了少量的PHB積累。結(jié)果證明,構(gòu)建了一株可以利用纖維素類物質(zhì)生產(chǎn)PHB的大腸桿菌,提供了一株有效利用纖維素為唯一碳源積累生物能源物質(zhì)的基礎(chǔ)菌株。
進(jìn)一步使用纖維素類物質(zhì)的酶解產(chǎn)物——纖維二糖,作為唯一碳源做發(fā)酵檢測。由于體系中不再需要纖維素內(nèi)切酶的作用,構(gòu)建了N20-Tfu0937融合蛋白,并檢測到了胞外蛋白分泌及相應(yīng)的β-葡聚糖苷酶酶活。不添加葡萄糖的培養(yǎng)基
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