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文檔簡介
1、目的:
本研究擬采用雙基因轉(zhuǎn)染技術,將Shox2與HCN4雙基因共同轉(zhuǎn)染至犬MSCs,并行脈沖微電流刺激(electric pulse current stimulation,EPCS)模擬體內(nèi)微電環(huán)境,在體外進行誘導分化培養(yǎng),以獲得具有心臟起搏細胞特性的起搏樣細胞,為在體心臟生物起搏研究奠定實驗基礎。
研究方法:
1.參照本實驗室前期建立的方法進行犬MSCs分離、培養(yǎng)與鑒定,而后進行MSCs純化及擴增,倒
2、置顯微鏡下觀察培養(yǎng)細胞的形態(tài)學特征。
2.慢病毒載體構建:分別構建攜帶HCN4+GFP、Shox2+RFP基因及僅含RFP的慢病毒載體,獲得pLentis-HCN4-GFP、pLentis-Shox2-RFP及pLentis-RFP。病毒載體內(nèi)攜帶嘌呤霉素抗藥基因可用于細胞純化。
3.將已構建好的慢病毒載體分別轉(zhuǎn)染至第3代生長良好的cMSCs,獲得以下四組。
①HCN4組:轉(zhuǎn)染pLentis-HCN4-GF
3、P。
?、赟hox2組:轉(zhuǎn)染pLentis-Shox2-RFP。
?、跾hox2-HCN4組:共轉(zhuǎn)染pLentis-Shox2-RFP和pLentis-HCN4-GFP。
?、軐φ战M(RFP組):只轉(zhuǎn)染pLentis-RFP。
轉(zhuǎn)染前行預實驗確定慢病毒的最佳細胞轉(zhuǎn)染密度、最佳轉(zhuǎn)染體系、共轉(zhuǎn)染的最佳轉(zhuǎn)染體系,必要時可用嘌呤霉素篩選純化轉(zhuǎn)染陽性的細胞。各組細胞分別進行體外擴增培養(yǎng)。
4.對經(jīng)誘導分
4、化培養(yǎng)后的各組細胞進行檢測
①細胞形態(tài)學檢測:光學顯微鏡下觀察各組細胞大小及形態(tài)結構特征;透射電鏡觀察細胞超微結構及細胞間連接特征。
②免疫熒光檢測各組細胞Shox2、HCN4、Cx43、Cx45、cTnT蛋白表達。
?、鄯謩e用定量RT-PCR(qRT-PCR)、Western blotting方法檢測相關基因mRNA和蛋白表達情況,如:Shox2、Nkx2.5、Tbx3、HCN4、Cx43、Cx45等。
5、r> ?、芗毎娚韺W檢測:選擇培養(yǎng)至5-7天的細胞,用全細胞膜片鉗技術檢測各組細胞膜電流If表達情況。
5.EPCS誘導經(jīng)Shox2、HCN4基因修飾的cMSCs分化為心臟起搏樣細胞
(1)實驗分組
?、倩蜣D(zhuǎn)染組:又分為HCN4組、Shox2組、Shox2-HCN4組、RFP組(對照組)。
?、诨蜣D(zhuǎn)染+EPCS誘導組:又分為HCN4+EPCS組、Shox2+EPCS組、Shox2-HCN4+EP
6、CS組、RFP+EPCS組。
(2)體外誘導培養(yǎng)與檢測
?、賹⒒蜣D(zhuǎn)染+EPCS誘導組細胞傳代到60 mm的培養(yǎng)皿中,鉑金絲為電極導絲。
?、谠诩毎N植后第二天即開始行EPCS,每天刺激3-6 h,刺激5天直到細胞達到95%增殖,中途換液1次。所有實驗均重復3次。
?、廴PCS刺激第5天的轉(zhuǎn)染+EPCS誘導組細胞,轉(zhuǎn)染組細胞為同一代數(shù)培養(yǎng)第5天的細胞進行檢測,檢測方法與內(nèi)容同方法4。
結果:
7、
1.犬MSCs的分離、培養(yǎng)
采用全細胞貼壁篩選分離法培養(yǎng)cMSCs,原代細胞48 h首次換液后,貼壁細胞呈類圓形、多角形、短梭形,細胞生長緩慢。5~7天后貼壁細胞分裂增殖加快,相鄰細胞之間逐漸匯合,可見集落形成,10~14天細胞生長融合可達80%,呈渦旋狀或放射狀分布排列。傳代培養(yǎng)后cMSCs貼壁速度比原代細胞快,呈均勻分布生長。隨著細胞換液和傳代,貼壁細胞形態(tài)逐漸趨于一致;傳代至第3代時可得到純化的呈典型多邊形或
8、長梭形的細胞,胞體飽滿,折光性好,具有良好的增殖能力。
2.慢病毒載體介導Shox2、HCN4雙基因轉(zhuǎn)染犬MSCs
(1)轉(zhuǎn)染效率的比較
①單獨轉(zhuǎn)染pLentis-Shox2-RFP、pLentis-HCN4-GFP:以1.0×104 cells/cm2的密度傳代,在次日轉(zhuǎn)染時細胞達到50~60%匯合;慢病毒轉(zhuǎn)染復數(shù)MOI=20,聯(lián)合助轉(zhuǎn)染劑polybrene2ug/ml,轉(zhuǎn)染時間24 h,該條件下行轉(zhuǎn)染可
9、取得良好的效果。細胞轉(zhuǎn)染后72~96 h,HCN4組細胞可在熒光顯微鏡下觀察到綠色熒光蛋白GFP的表達;Shox2組細胞可觀察到紅色熒光蛋白RFP的表達,兩組細胞隨著培養(yǎng)時間增加,熒光蛋白表達呈增多、增強的趨勢。在MOI=20時,HCN4組和Shox2組細胞的轉(zhuǎn)染效率分別為92±3.7%和94±2.5%(n=5),與對照組RFP組細胞的轉(zhuǎn)染效率相當(96±3.5%)。說明此兩實驗組細胞的轉(zhuǎn)染效率良好。
?、诠厕D(zhuǎn)染pLentis-
10、Shox2-RFP和pLentis-HCN4-GFP:以1.0×104 cells/cm2的密度傳代,在次日轉(zhuǎn)染時細胞達到50~60%,給予先轉(zhuǎn)染Shox2(MOI=20,polybrene2ug/ml);24h后棄去廢液,重新加入慢病毒HCN4(MOI=27,polybrene2ug/ml)。結果發(fā)現(xiàn):聯(lián)合HCN4共轉(zhuǎn)染72 h后,Shox2-HCN4組細胞可在熒光顯微鏡下觀察到紅綠兩種熒光蛋白混合表達(偏紅色、偏綠色、混合橙色),激
11、光共聚焦顯微鏡下計數(shù)Shox2-HCN4共轉(zhuǎn)染細胞的比例為85±2.3%(n=5),共轉(zhuǎn)染效率較高。
(2)細胞形態(tài)學變化
轉(zhuǎn)染慢病毒后,HCN4組、Shox2組和Shox2-HCN4組細胞較對照組細胞生長變慢,其中Shox2-HCN4組細胞生長更慢。三組細胞形狀也發(fā)生了巨大的變化,顯微鏡下可見少數(shù)細胞呈分叉和長棒形。
(3)免疫熒光結果分析
免疫熒光結果顯示,HCN4組細胞可見HCN4蛋白表達;
12、Shox2組和Shox2-HCN4組細胞除能表達Shox2蛋白外,還可見HCN4及心肌特異性標志物eTnT表達,其中以Shox2-HCN4組表達更顯著。
(4)分子生物學檢測
選擇培養(yǎng)5-7天的各組細胞,PCR和Western blotting結果顯示:
?、貶CN4、Tbx3和Cx45:與僅轉(zhuǎn)染RFP的對照組比較,Shox2組中HCN4、Tbx3和Cx45的mRNA和蛋白表達均增加;Shox2-HCN4組T
13、bx3和Cx45增加較Shox2組更顯著;HCN4組中可見Cx45的表達。
②Nkx2.5及Cx43:與僅轉(zhuǎn)染RFP的對照組比較,Shox2組Nkx2.5、Cx43的mRNA和蛋白表達均下降;Shox2-HCN4組Nkx2.5、Cx43mRNA和蛋白表達下降更為顯著;HCN4組細胞中可見Cx43的表達。
結論:
1.應用慢病毒載體pLentis-Shox2-RFP和pLenfis-HCN4-GFP成功將Sh
14、ox2-HCN4雙基因共同轉(zhuǎn)染入cMSCs。
2.cMSCs轉(zhuǎn)染Shox2后,能夠促進cMSCs向心臟起搏樣細胞分化??捎^察到心肌特異性標志物cTnT,在基因和蛋白水平表達起搏細胞標志物HCN4,Tbx3和Cx45,而抑制心肌工作細胞標志物Nkx2.5及Cx43的表達,并能產(chǎn)生功能性If起搏電流,具有心臟發(fā)育早期的起搏樣細胞特點。
3.EPCS作為誘導干預手段能夠促進轉(zhuǎn)染Shox2的cMSCs向起搏樣細胞分化,使If
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