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文檔簡介
1、目的:
提出假設:1.在TDI誘導的哮喘小鼠模型中,PI3K信號通路介導肺組織HMGB1的產生。2.NLRP3炎癥體和caspase-1在這個過程中發(fā)揮作用。
內容:
第一部分:根據TDI哮喘的特點,參考課題組前期造模方式建立TDI誘導的哮喘小鼠模型;在此模型的基礎之上給予PI3K抑制劑LY294002干預(腹腔注射),觀察小鼠過敏性氣道炎癥的變化以及小鼠肺組織中HMGB1的變化情況。
第二部分:
2、給予PI3K抑制劑LY294002干預后,觀察TDI哮喘小鼠肺組織中NLRP3炎癥體是否有激活。
材料與方法:
6周齡的SPF級雄性BALB/c小鼠48只,體重為20-22 g(購于南方醫(yī)科大學實驗動物中心)。丙酮、橄欖油、TDI、乙酰甲膽堿;LY294002; HE染液,PAS染液;DAB顯色試劑盒。小鼠IgE、白細胞介素-4(IL-4) ELISA試劑盒。HMGB1一抗、caspase-1、 IL-1β、NLRP
3、3一抗。
1.動物模型的制備
BALB/c小鼠在南方醫(yī)科大學實驗動物中心具有12小時明暗周期的SPF級別動物房飼養(yǎng),所有實驗操作嚴格遵守南方醫(yī)科大學動物學科委員會管理規(guī)范。48只小鼠隨機分為4組:(1) AOO組(即對照組,用AOO致敏、AOO激發(fā)、PBS處理,其中AOO是TDI的溶劑);(2) TDI組(即實驗組,用TDI致敏、TDI激發(fā)、PBS處理);(3) TDI+LY294002組(即PI3K干預組,用TDI
4、致敏、TDI激發(fā)、LY294002處理);(4) TDI+DMSO組(用TDI致敏、TDI激發(fā)、DMSO處理,其中DMSO是LY294002的溶劑)。AOO組:第1天、第8天致敏,具體方法:將丙酮和橄欖油的混合液(體積比為2∶3)20微升滴到小鼠耳背部,40 uL/只小鼠;第15天、第18天、第21天給予霧化吸入激發(fā),具體方法:將小鼠放進霧化箱,用移液槍將丙酮橄欖油混合液(體積比為1∶4)放進壓縮空氣霧化裝置持續(xù)霧化2小時。每次激發(fā)前1
5、小時按50uL每只的劑量腹腔注射生理鹽水。TDI組:第1天、第8天致敏,具體方法:0.3%TDI20uL(丙酮和橄欖油體積比為2∶3)滴到小鼠耳背部,40uL/只小鼠;第15天、第18天、第21天給予霧化吸入激發(fā),具體方法:將小鼠放進霧化箱,用槍將3%TDI(溶于體積比為1∶4的丙酮和橄欖油混合液)放進霧化裝置,持續(xù)霧化2小時。每次激發(fā)前1小時按50uL每只的劑量腹腔注射生理鹽水。TDI+LY294002組操作過程同TDI組,每次激發(fā)前
6、1小時按1.5mg/kg劑量腹腔注射LY294002(LY294002溶于DMSO,用0.9% NaCl稀釋至50uL)。作為對照,TDI+DMSO組,與TDI+LY294002組操作過程同,每次激發(fā)前1小時腹腔注射等劑量的DMSO(DMSO用0.9% NaCl稀釋至50uL)。
2.氣道高反應性檢測
小鼠氣道高反應性檢測于第3次激發(fā)結束后24h進行,簡要過程如下:將小鼠置于氣壓體積描記儀主倉內,用乙酰甲膽堿按遞增濃
7、度(濃度0-10mg/mL)加入霧化器,霧化后乙酰甲膽堿進入氣壓體積描記儀主倉,每個濃度霧化后檢測3min,同時觀察小鼠反應,BUXCO無創(chuàng)肺功能檢測儀記錄小鼠的氣道反應性指標Penh(enhanced pause)。
3.動物處死和取材
小鼠肺功能測量結束后24h,用致死量的戊巴比妥鈉(100 mg/kg體重)腹腔內注射麻醉處死小鼠,給予小鼠眼球摘除,取血,將全血靜置1h后,離心20分鐘,轉速3000轉/分,取上清
8、,-80℃保存?zhèn)溆谩⒚恐恍∈蟮念i部淋巴結分離摘除,予氣管插管,用縫線固定導管,行肺泡灌洗術:用0.8mL的預熱的生理鹽水(0.9% NaCl,37℃)緩慢、輕柔地注入肺內,繼之回抽,重復3次,最后收集肺泡灌洗液于EP管內。然后,將導管插入左肺,往左肺注入4%福爾馬林中性緩沖液0.2mL行內固定,摘除左肺,置于4%福爾馬林中性緩沖液進行外固定,常溫保存,作以后病理切片備用;摘除右肺-80C保存,作以后免疫印跡備用。
4.淋巴細
9、胞培養(yǎng)及淋巴上清IL-4檢測
將上述摘除的各組小鼠頸部淋巴結分別放入1.5ml EP管,所有EP管均置于冰上,加入1.0mL RPMI-1640。將EP管中淋巴結轉移至40μm細胞篩上,眼科鑷輕輕擠壓,10mL RPMI-1640沖洗,15mL離心管收集沖洗液,取10uL沖洗液計數(shù)細胞,剩余沖洗液予1000轉/分,離心3分鐘,棄上清液,用RPMI-1640重懸至細胞濃度為107/ml,準備48孔板,每孔加入900uL全培養(yǎng)基(
10、RPMI-1640含10%FBS及5 mg/mL刀豆球蛋白A),將100uL的細胞懸液加入其中使得細胞濃度為106/mL。放置37℃培養(yǎng)箱43小時。培養(yǎng)結束后取培養(yǎng)液1000轉/分離心10分鐘,上清分裝,放置-80℃保存,用于檢測IL-4。
結果:
1.LY294002對TDI誘導的哮喘小鼠PI3K信號通路的影響
為確認PI3K抑制劑LY294002對PI3K信號通路的作用,我們檢測p-Akt, PI3K最
11、重要的下游分子。我們發(fā)現(xiàn)與AOO組相比,TDI組小鼠在TDI致敏和激發(fā)后,肺組織p-Akt的表達可顯著上調(p<0.05),而TDI+LY294002組中,LY294002預處理可顯著減輕TDI誘導的p-Akt表達上調(p<0.05)。TDI+DMSO組p-Akt表達與TDI組相似,表明LY294002的溶媒DMSO本身并不影響p-Akt表達(p>0.05)。
2.PI3K介導TDI誘導的哮喘小鼠氣道高反應性和過敏性氣道炎癥<
12、br> 首先,PI3K介導TDI誘導的氣道高反應性。與AOO相比,在遞增濃度的乙酰甲膽堿(1.25、2.5、5、10mg/mL)刺激后,TDI組小鼠的Penh值顯著增加(p<0.05)。所有這些改變在LY294002治療后部分恢復(p<0.05)。再者,與AOO組相比,TDI組哮喘小鼠血清總IgE的釋放顯著增加(p<0.05),以及淋巴細胞上清培養(yǎng)液的IL-4明顯增加(p<0.05),而PI3K抑制劑LY294002預處理均可使兩者明
13、顯降低(p<0.05)。
最后,我們評估小鼠肺泡灌洗液總細胞數(shù),以及巨噬細胞、中性粒細胞、嗜酸性粒細胞和淋巴細胞分類計數(shù)。無論是總細胞數(shù),還是中性粒細胞或嗜酸性粒細胞計數(shù),均在TDI刺激后明顯增多(p<0.05)。肺組織學檢查顯示出類似的結果,暴露于TDI的小鼠肺組織中發(fā)現(xiàn)更多的炎癥細胞浸潤和顯著的上皮增殖。 LY294002同樣可以部分逆轉TDI誘導的BALF和肺組織中的這些改變(p<0.05)。
3.PI3K參與
14、了肺組織HMGB1的生產及其核漿轉位
免疫印跡結果示:和上述氣道高反應性和過敏性氣道炎癥一致,肺組織HMGB1的蛋白表達水平在TDI組小鼠比AOO組顯著增高。通過免疫組織化學染色檢查小鼠肺組織切片也可獲得類似的結果:在AOO組,HMGB1幾乎只分布在肺組織各種細胞的細胞核,然而,3次TDI激發(fā)后,HMGB1從細胞核轉位到細胞漿,彌漫分布于支氣管上皮細胞、肺泡上皮細胞、氣道成纖維細胞和浸潤于肺組織的各種炎癥細胞。值得注意的是,在
15、PI3K抑制劑LY294002預處理后,無論是HMGB1在肺組織的高表達,還是其核漿轉位均在很大程度上得到減輕(p<0.05)。
4.LY294002對肺組織caspase-1激活的影響
為進一步探討PI3K是通過什么機制調節(jié)TDI誘導的過敏性氣道反應過程中HMGB1生產和釋放,我們測量HMGB1最為人所公認的上游分子caspase-1。首先,使用免疫組織化學的方法,我們發(fā)現(xiàn),TDI致敏和激發(fā)后,小鼠肺組織表達的ca
16、spase-1明顯增多,支氣管上皮細胞、肺泡上皮細胞、各種炎癥細胞細胞漿內可見非常濃厚的caspase-1分布,同樣地,LY294002預處理大大減弱這種TDI誘導的caspase-1上調。然后,我們通過免疫印跡檢測caspase-1的前體procaspase-1(45KD)和成熟體caspase-1(20KD)在肺組織的蛋白質含量,可見:與AOO組相比,TDI組小鼠肺組織成熟體caspase-1(而不是前體procaspase-1)的
17、蛋白質水平顯著升高(p<0.05)。這表明我們通過免疫組織化學染色觀察到的TDI誘導的caspase-1表達增加主要是由于成熟體caspase-1構成。我們進一步發(fā)現(xiàn),這種增加的caspase-1表達在PI3K抑制劑LY294002預處理后明顯逆轉(p<0.05),而procaspase-1在各組小鼠肺組織的表達幾乎保持不變(p>0.05)。這些數(shù)據表明,TDI誘發(fā)哮喘小鼠中肺組織caspase-1的激活,而PI3K活性是caspase
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