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文檔簡介
1、第一部分:分離、培養(yǎng)的新生大鼠胰島β細胞形態(tài)及功能鑒定 目的:探討體外培養(yǎng)的新生大鼠胰島β細胞的功能狀態(tài)。 方法:采用膠原酶對1~3日齡Wistar大鼠胰腺組織進行分次短時消化。倒置顯微鏡觀察接種18h細胞生長情況。繼續(xù)培養(yǎng)72h,雙硫腙(dithizone,DTZ)染色及胰島素免疫組化染色鑒定β細胞,放射免疫法檢測葡萄糖刺激下胰島素分泌水平。 結(jié)果:臺盼藍染色胰島細胞存活率>90%,DTZ染色可染率>80
2、%,細胞分泌功能正常。 結(jié)論:膠原酶分次短時消化胰腺組織,細胞接種后及時轉(zhuǎn)板的分離培養(yǎng)方法為本實驗提供了純度較高、功能良好的胰島細胞。 第二部分:α-生育酚對鏈脲菌素誘導(dǎo)大鼠胰島β細胞損傷的干預(yù)效應(yīng) 目的:探討α-生育酚(α-tocopherol,α-T)對鏈脲菌素(strep-tozotocin,STZ)誘導(dǎo)大鼠胰島β細胞損傷的干預(yù)效應(yīng)。 方法:1.分組:分離1~3日齡wistar大鼠胰腺進行體
3、外培養(yǎng),培養(yǎng)的細胞隨機分為4組:(1)對照組:培養(yǎng)的胰島細胞不作任何干預(yù)處理;(2)α-T組:培養(yǎng)液中僅加入終濃度為20rag/L α-T作用24h;(3)STZ組:培養(yǎng)液中僅加入終濃度為0.58mg/L的STZ作用30min;(4)干預(yù)組:培養(yǎng)液中加入終濃度為20mg/L α-T預(yù)處理24h后,再加入終濃度為0.58mg/L的STZ作用30min。各組作用時間一到,即離心棄上清液,用新鮮培養(yǎng)液重懸細胞,繼續(xù)培養(yǎng)18h后檢測各項指標(biāo)。2
4、.方法:采用MTT比色法檢測胰島細胞活性,放射免疫法檢測上清液中胰島素含量,透射電鏡觀察細胞形態(tài),Hochest33258熒光染色觀察細胞熒光強度,TUNEL法檢測細胞凋亡率。 結(jié)果:與對照組比較,STZ組胰島細胞活性、胰島素含量明顯降低,而胰島細胞凋亡率顯著升高(P<0.05)。同時,STZ組電鏡觀察到凋亡細胞,Hochest33258熒光染色發(fā)現(xiàn)發(fā)明亮淡藍色強熒光細胞數(shù)顯著增多(P<0.05)。而在STZ作用前給予α-T預(yù)
5、處理的干預(yù)組,胰島細胞活性、胰島素含量及胰島細胞凋亡率雖未恢復(fù)到對照組水平,但其下降和上升的程度較STZ組出現(xiàn)明顯抑制(P<0.05)。 結(jié)論:α-T能夠抑制STZ所致胰島β細胞凋亡而起到β細胞保護作用。 第三部分:α-生育酚對鏈脲菌素誘導(dǎo)大鼠胰島β細胞損傷的干預(yù)機理 目的:探討α-T對STZ誘導(dǎo)大鼠胰島β細胞損傷的干預(yù)機理。 方法:1.分組:同第二部分。 2.方法:采用分光光度計測量上
6、清液中總抗氧化能力(T-AOC)水平、超氧化物歧化酶(SOD)活性、丙二醛(MDA)水平,一氧化氮合酶(NOS)活性、NO水平及胰島細胞特異性半胱氨酸酶-3(caspase-3)活性、特異性半胱氨酸酶-8(caspase-8)活性。免疫組化法測定胰島細胞bcl-x1、bax蛋白表達。 結(jié)果:與對照組比較,STZ組上清液中T-AOC水平、SOD活性明顯降低(p<0.05),MDA、NO水平顯著升高(p<0.05),而NOS活性無
7、顯著性改變(p<0.05)。胰島細胞caspase-3活性、caspase-8活性、bax表達明顯升高(p<0.05),bcl-xl表達明顯降低(p<0.05)。在STZ作用前給予α-T預(yù)處理的干預(yù)組,上述指標(biāo)的變化雖未恢復(fù)到對照組水平,但其下降和上升的程度較STZ組出現(xiàn)明顯抑制(p<0.05)。 結(jié)論:α-T抑制STZ所致胰島β細胞凋亡的機制與增強細胞抗氧化能力,清除自由基,減少脂質(zhì)過氧化,從而降低caspase-3、cas
8、pase-8、bax/bcl-xl比例有關(guān)。 第四部分:α-生育酚對鏈脲菌素誘導(dǎo)大鼠胰島β細胞損傷干預(yù)的劑-效關(guān)系 目的:探討α-T對STZ所致大鼠胰島β細胞損傷干預(yù)的劑-效關(guān)系。 方法:培養(yǎng)的胰島細胞分為4組:(1)對照組:培養(yǎng)的胰島細胞不作任何干預(yù)處理;(2)α-T組:培養(yǎng)液中僅加入終濃度為80mg/L α-T作用24h;(3)STZ組:培養(yǎng)液中僅加入終濃度為0.58mg/L的STZ作用30min;(4
9、)干預(yù)組:培養(yǎng)液中加入終濃度為5mg/L、10mg/L、20mg/L、40mg/L及80mg/L的α-T作用24h后,再加入終濃度為0.58mg/L的STZ作用30min。各組作用時間一到,即離心棄上清液,用新鮮培養(yǎng)液重懸細胞,繼續(xù)培養(yǎng)18h后采用MTT法檢測胰島細胞活性、放射免疫法測定胰島素含量、分光光度計測量上清液中T-AOC水平。結(jié)果:與STZ組比較,不同濃度α-T(5~80mg/L)干預(yù)組中胰島細胞活性、胰島素分泌量及T-AOC
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