2023年全國碩士研究生考試考研英語一試題真題(含答案詳解+作文范文)_第1頁
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文檔簡介

1、光鏡下觀察組織標本需克服的幾個問題,如何保持組織標本取材前的形態(tài)? 如何制備薄組織片,允許光的通過而便于 觀察? 如何使不同組織結構具有不同的光折射 率,便于對標本進行結構的仔細辨別?,光鏡標本的基本制作技術,第二章,光鏡樣本的基本制作技術(組織制片技術)是醫(yī)學研究和生物學研究中,觀察細胞、組織的正常或病理形態(tài)變化的一種必不可少的手段,借此可以彌補活體觀察的不足 同時光鏡樣本的基本制作技術

2、也是其它光鏡標本技術的基礎,取材 固定 漂洗 脫水 透明 浸蠟 包埋 切片 脫蠟 染色 脫水 透明 封片,,,,,,,,,,,,,光鏡樣本的制作的基本過程,第一節(jié) 取材及固定,醫(yī)學研究的組織樣本來源 人體(最好

3、) 臨床的活檢組織 尸檢組織 (取材方法及注意事項按病理學要求進行) 正常組織 用正常動物的組織材料替代,一、動物致死法,動物的福利,3R原則 動物致死法選擇 致死動作應迅速,1.斷頭法 2.擊頭法 3.麻醉法4.股動脈放血法 5.空氣栓塞法,動物致死方法,細胞標本制備,1. 印

4、片法 2. 穿刺法 3. 沉淀法 4. 培養(yǎng)細胞標本制備,二、取材及注意事項,1.材料保持新鮮2.組織塊免受擠壓3.組織塊力求小而薄 4.盡量保持組織的原有形態(tài)5.選取好組織塊的切面 6.動物品種的選擇和熟悉取材的解剖位置7.切除不需要的部分8.保持材料的清潔,三、組織固定法,固定是使要觀察的組織構造盡量接近它取材前的狀態(tài),(一)固定目的 1.標本不發(fā)生離開身體后或死后變化

5、 2.隨后處理中,標本不易損壞 3. 組織塊硬化 4.使組織內(nèi)各種結構產(chǎn)生不同的折光 率,或?qū)θ玖暇哂胁煌挠H和力,(二)固定方法 1.蒸氣固定法(較細小而薄的標本) 2.小塊組織固定法(直接投入固定液中) 3.注射、灌注固定法(體積過大或固定 液極難滲入內(nèi)部

6、的組織標本) (1)局部灌注固定(肺、肝、腎、腦等) (2)全身灌注固定 (小鼠、大鼠、兔、 狗、猴、人) 4. 微波固定法,灌注過程 充分暴露心臟 針尖插入左心室或升主動脈中 快速灌注生理鹽水 剪開右心耳(或右心房)放血

7、 換灌固定液,先快后慢輸入,用量 1. 生理鹽水 大鼠需用80-100ml、兔150-200ml、 貓200-250ml、猴300-500ml、 狗800-1000ml 2. 固定液 動物血液量的2倍

8、 動物體重(g)×7%×20(ml),無論是局部灌注固定,還是全身灌注固定,在灌注完畢后,必須立即將組織塊、器官或整個動物再放入同樣的固定液中進行后固定,1.組織塊不宜過大 2.軟組織或較大塊組織可先經(jīng)2~3小時固定后,再修整成小塊重投入新配制的固定液內(nèi)繼續(xù)固定 3.固定液的量是組織塊大小的5-20倍為宜,在固定組織的瓶底墊上脫脂棉、數(shù)層紗布或濾紙 4.固定時

9、間的長短視固定劑的種類、溫度、組織塊的大小而定,(三)固定注意事項及影響因素,1.甲醛(福爾馬林):商品甲醛的濃度是37% ~ 40%的甲醛水溶液。常用甲醛的固定液濃度是10%,而實際甲醛濃度只有4% 固定小塊組織(15×15×2mm)10小時左右 經(jīng)它長期固定的組織,需經(jīng)24~48小時的自來水流水沖洗,四、固定液 (一)單純固定液,甲醛單純固定液的常用配方

10、10%甲醛水溶液 37%-40%甲醛液 10ml 自來水或蒸餾水 90ml 10%甲醛生理鹽水溶液 37%-40%甲醛液 10ml 氯化鈉 0. 85g

11、 自來水或蒸餾水 90ml,2.多聚甲醛:一種滲透速度極快的甲醛聚合物,在熱水中可解聚成甲醛單體而溶解,在接近水的沸點時溶解極快;也可溶解于弱堿中。多聚甲醛溶液實際上是新配制的甲醛液,宜臨用前配制,4%多聚甲醛單純固定液的常用配方 多聚甲醛 4g

12、 蒸餾水(或0.2 mol/L PB) 50ml 在通風櫥內(nèi)加熱使之完全溶解,然后冷卻 0.2 mol/L PB(或蒸餾水) ~100ml,3.戊二醛:一種常用的醛類固定劑,能較好的保存組織結構,但其穿透力弱,作為單純固定液多用于電鏡技術中。市售的戊二醛是25%的溶液,使用時需配制成1%~6%的不同濃度,4.酒精:單純固定液為80%~95%的

13、濃度,不必水洗而直接脫水。多用于組織化學中的糖原固定 酒精固定的組織易變硬和發(fā)脆、組織收縮較大,所以不易長時間停留其中(70%酒精除外) 可作為配制混合固定液的基本成分,5 .其它固定液 丙酮 苦味酸 醋酸 重鉻酸鉀 三氯醋酸 鉻酸

14、 氯化汞 鋨酸,用多種具有固定作用的試劑混合配制的固定液,達到各試劑在固定作用中具有的優(yōu)缺點平衡目的,(二)混合固定液,常用混合固定液,1.酒精-甲醛液(A-F 液) 95%或無水酒精(A) 90ml 37%~40%甲醛液(F) 10ml 2

15、.Carnoy液 冰醋酸 10ml 氯仿 30ml 無水酒精

16、 60ml3.Bouin 液 飽和苦味酸水溶液 75ml 甲醛液(37%~40%) 25ml 冰醋酸 5ml,4.Helly 液

17、 重鉻酸鉀 2.5g 升汞 5g 蒸餾水 100ml (以上是Helly儲存液)

18、 甲醛液(37%~40%) (臨用時加入) 5ml 5.1%多聚甲醛-1.25%戊二醛固定液 多聚甲醛 1g 蒸餾水 50ml 在通風櫥內(nèi)加熱使之完全溶解,然后冷卻

19、 25%戊二醛 5ml 0.2 mol/L PB(pH 7.4) ~100ml,第二節(jié) 固定后處理及切片,一、組織修整 固定結束后,將受擠壓或不需要的部分組織修切或整形,同時選擇好包埋面,稱組織修整。修整可在沖洗前、也可放在沖洗后,二、組織洗滌,洗去滲入組織內(nèi)的固定液,再進行

20、下一步驟的操作;否則會妨礙染色效果,或引起沉淀、結晶而影響觀察,也可能會繼續(xù)發(fā)生化學反應造成后道操作困難 1.水洗滌法:凡用水配制、或含鉻、鋨等的固定液所固定的組織塊,需用水洗滌 2.酒精洗滌法:凡用酒精、或酒精混合液、或含有苦味酸等固定液固定的組織塊,多采用酒精洗滌,三、組織脫水,(一)脫水意義與脫水劑 因水和石蠟不能相溶,而組織經(jīng)固定及水洗后含有水分,所以不能直接用石蠟進行包埋。需用某

21、些溶劑逐步置換組織塊中的水分,稱脫水 脫水劑必須具有下列特性:1)脫水劑能與水按任意比例混合;2)脫水劑高濃度時不含水分;3)脫水劑也能與透明劑按任意比例互相混合,脫水劑中最常用的是酒精。 一般從70%酒精開始脫水,逐步升高酒精濃度;脫水時間根據(jù)組織塊的種類、大小、及使用的固定液種類等因素而定,70%酒精 2~5小時(可長期保存組織) 80%酒精

22、 2~5小時 90%酒精 2~5小時 95%酒精(Ⅰ) 2~5小時 95%酒精(Ⅱ) 2~5小時 無水酒精(Ⅰ) 30分鐘 無水酒精(Ⅱ) 30分鐘 無水酒精(Ⅲ) 30分鐘,(二)脫水步驟和時間 以18mm×18mm,厚約2~3m

23、m的組織塊 為例,其脫水步驟和參考時間如下,(三)脫水注意事項 1.組織脫水必須掌握由低濃度逐步 過渡到高濃度的原則 2.脫水時間要適度 3.組織脫水要徹底干凈,四、透明,(一)透明意義及透明劑 組織脫水后,內(nèi)部僅含脫水劑,但大多數(shù)脫水劑不能與石蠟相溶,石蠟仍不能浸入組織內(nèi)進行包埋和切片。為此,需要一種既能溶于脫水劑又能溶于包埋劑

24、(石蠟)的溶劑,以便逐步將脫水劑置換成包埋劑。這一過程往往使組織呈半透明狀,故稱透明 二甲苯為石蠟包埋法中最常用的透明劑;它透明能力強,但易使組織收縮、變脆,故組織塊的透明時間不宜太長,小組織塊以30分鐘為宜,較大組織塊適當延長但不超過2小時,(二)透明步驟和時間 為了減少組織塊過度收縮,往往在無水酒精之后,先經(jīng)過酒精和二甲苯的混合液,然后再浸入純二甲苯中 透明步驟和時間大致如下

25、 1.無水酒精:二甲苯=1:1 20~30分鐘 2.二甲苯(Ⅰ) 20~30分鐘 3.二甲苯(Ⅱ) 20~30分鐘,(三)透明注意事項 二甲苯必須保持無水 組織塊脫水過程要徹底,五、浸蠟,(一)浸蠟目的 浸蠟是將透明過的組織塊在熔化

26、的石蠟中浸漬的過程。目的是用石蠟代替組織塊中的二甲苯,在隨后溫度下降中,使較軟的組織塊變成有一定硬度的組織蠟塊,以便切片機切片,第1杯熔蠟(軟蠟)(熔點54℃以下) 1小時 第2杯熔蠟(硬蠟)(58~60℃) 1小時 第3杯熔蠟(硬蠟)(58~60℃) 30分鐘 整個浸蠟時間控制在3小時之內(nèi) 浸

27、蠟在恒溫箱中進行,且恒溫箱溫度高 于石蠟熔點 2~3℃,(二)浸蠟的步驟,(三)浸蠟注意事項 1.浸蠟最佳溫度應是石蠟剛熔化、或蠟杯底部 尚殘留小部分未熔完蠟時的溫度 2.浸蠟中一般采用浸蠟籃浸蠟法,把組織塊和 標簽一齊裝入分格籃內(nèi)浸蠟 3.石蠟應在加熱的條件下過濾除去雜質(zhì) 4.浸蠟用的石蠟要定期更換

28、 5.新石蠟應在使用前放在溫箱內(nèi)熔化一次,使 其中的揮發(fā)性物質(zhì)蒸發(fā) 6.包埋結束后應將熔蠟從溫箱內(nèi)取出,以免 石蠟無益地加溫熔化,六、包埋(石蠟包埋法),(一)包埋目的及包埋劑 包埋是將某些特殊的支持物質(zhì)浸入到組織塊內(nèi)部,利用支持物質(zhì)的物理特性,將整個組織加以包埋,最后凝固成均勻一致的較硬固態(tài)結構,以便切片機制備極薄切片

29、石蠟是組織學切片技術中最常用的包埋劑,(二)包埋過程 1.取預熱包埋框及金屬板,搭成包埋模具 2. 迅速傾注少量熔蠟于包埋框中 3. 從蠟杯中夾取組織塊,切面向下置于框底 4. 加熔蠟至包埋框上緣 ,將標簽紙緊貼旁邊 5. 表面熔蠟凝結至一定厚度時,慢慢浸入冷水 中(夏天用冰水)急速凝固

30、 6. 凝結蠟塊自動漂浮于水面,或30分鐘后推開 包埋框,取出蠟塊。 7. 修塊,(三)包埋注意事項 1.包埋蠟的熔點選擇 2.石蠟脆性大時,可加蜂蠟提高韌性 3.包埋用石蠟和最后浸蠟的石蠟熔點要 相同 4.包埋中組織塊間要有一定距離 5

31、.石蠟凝固要快速,七、切片,(一)石蠟切片機及切片刀 1.石蠟切片機 最常用的石蠟切片機是輪轉式切片機,它的切片刀固定不動,而靠右側旋轉的重輪帶動螺紋軸和齒輪,將組織塊夾具按所調(diào)節(jié)的切片厚度向前推進,并在上下平面運動,讓組織塊經(jīng)過前下方切片刀而切成一定厚度的切片,2.切片刀與磨刀 石蠟切片常用的切片刀為平楔型切片刀,也有一次性切片刀 非一次性使用的切片刀在切片前需要研磨,以

32、保持其鋒利;研磨刀可分為手工研磨刀和機械研磨刀(磨刀機)兩種,(二)石蠟切片過程 1.修塊 2.蠟塊和切片刀固定 3.調(diào)整蠟塊切面和切片刀角度(10°以內(nèi)) 4. 調(diào)整刀臺與標本臺距離 5. 修整蠟塊切面,暴露完整組織切面 6. 調(diào)整切片厚度調(diào)節(jié)器(厚度為6~8μm) 7. 正式切片

33、8.切片展平 9.貼片和烘片,(1)切片碎卷狀:脫水、透明或浸蠟時間長、浸蠟溫度高 (2)蠟片卷曲:刀口不鋒利或臟、刀角傾斜過度、石蠟過硬 (3)切片不成蠟帶:室溫低、石蠟過硬、蠟塊上下邊過小或 不平 (4)蠟帶彎曲:蠟塊的兩側大小不等、刀口不鋒利 (5)切片皺褶:石蠟過軟、浸蠟不完全、刀的傾斜角度過小 (6)切片厚薄不均:刀口不鋒利、切片機性能不佳、刀架或

34、 刀或蠟塊未固定牢 (7)切片出現(xiàn)縱紋:刀刃有缺口、石蠟或組織的硬度不一 (8)切片出現(xiàn)橫紋:蠟塊、刀或刀架未固定好 (9)切片粘刀:刀鋒沾污、刀的傾斜角度過小、刀口不鋒利 (10)蠟塊底邊呈白色:刀的傾斜角度過小 (11)切片粘蠟塊:刀純、刀口不潔、室內(nèi)溫度高、太干燥,(三)切片過程中常遇問題及可能造成原因,第三節(jié) 蘇木素-伊紅染色方法,染色是將組織浸入染料配制的染色液中,使組織中的不同結構染上不同顏色或

35、不同深淺的顏色,從而產(chǎn)生不同的折射率,便于在光鏡下清楚地顯示組織內(nèi)部各種構造,染料是一類有色的以苯環(huán)為基礎的有機化合物,它不同于一般顏料,因為它不但有顏色,更重要的是它對組織的不同成份具有不同的親和力。構成染料至少必須有兩種原子團連接于苯環(huán)上,即能使染料顯色的原子團-發(fā)色團和能使染料對不同組織具有不同親和力及加深顏色的原子團(酸、堿性基團)-助色團,分類 細胞核染料有天然染料蘇木素、胭脂紅及人工合成的染料結晶紫、

36、甲苯胺藍、甲基綠、美藍、焦油紫等 細胞質(zhì)染料有人工合成的伊紅Y、酸性復紅、苦味酸、水溶性苯胺藍等,媒染劑為有些二價或三價金屬物質(zhì),如鋁、鐵、銅、鎢等可作為中介媒體物質(zhì),使原來幾乎不與組織結合或結合能力很弱的部分染料(尤其是天然染料)著色;它主要是通過增加染料對組織中某一成份的親和能力,自身又與染料或組織發(fā)生結合而發(fā)揮作用,助染劑(促染劑)與媒染劑不同,它只加強染 料的染色能力,而自身不

37、參與染色反應 分化劑(脫色劑、分色劑)用于退行性染色 法中脫去組織過染的染料,降低著色顏色 酸性分化劑 0.5~1%的鹽酸酒精(95%以 下)或較稀的冰醋酸水溶液 氧化分化劑 苦味酸、鉻酸、重鉻酸鉀、 過錳酸鉀等

38、 媒染分化劑 既能促使組織和染料結合, 又可使已經(jīng)結合到組織上的染料脫離,一、蘇木素-伊紅染色的基本原理,蘇木素和伊紅染色是組織學中常規(guī)制片中最基本,也是應用最廣泛的染色方法,故稱常規(guī)染色(簡稱HE染色),蘇木素(或蘇木精)是一種天然的染料,易溶于酒精而微溶于水,是較好的細胞核堿性染料,并可將細胞中不同的結構分化出各種不同的顏色;蘇木素分子須經(jīng)氧化形成蘇木紅分子,才具有真正的染色能力;同

39、時須配合適當?shù)拿饺緞┮栽鰪娝鼘M織的親和力,達到染色目的 伊紅(或曙紅)是人工合成的煤焦油類染料,紅色粉末狀,易溶于水或酒精,為酸性細胞胞質(zhì)染料;有伊紅Y、B、BN等,常用的是伊紅Y。伊紅常作為蘇木素的對比染色染料,染色中常需加助染劑和分化劑,使染色效果更加好,二、蘇木素-伊紅染液的配制,(一)蘇木素染液 一種是將氧化劑(如氧化汞、高錳酸鉀、過氧化氫或碘酸鈉等)與媒染劑(硫酸鋁銨、硫酸鋁鉀或硫酸鋁鐵等)直

40、接混合于蘇木素中配成溶液 另一種是先用媒染劑媒染組織結構,再用氧化的蘇木素(自然氧化)染色,最后用媒染劑分色,Harris蘇木素染液 蘇木素 1g 無水酒精 10ml 硫酸鋁鉀(或硫酸鋁銨) 20g 蒸餾

41、水 200ml 氧化汞 0.5g,Mayer蘇木素液 蘇木素 1g 蒸餾水 1000ml

42、 碘酸鈉 0.2g 硫酸鋁鉀 50g 枸櫞酸鈉 1g 水合氯醛 50g,醇溶性伊紅染液

43、 伊紅Y 0.5g 95%酒精 100ml 水溶性伊紅染液 伊紅Y 0.5-1g 蒸餾水

44、 75ml 95%酒精 25ml 冰醋酸 1~2滴,(二)伊紅染液,(三)分化液,去除過度染色或不需要著色的組織成份上顏色的過程,叫分色   所使用的試劑配制的液體稱為分化液   而蘇木素的分化過程中,使酸性條件轉變成堿性

45、條件,蘇木素染色的結構也由紅色轉變成藍色,所以這一過程又稱藍化,1.氫氧化銨水溶液(pH 7.5-8.0 ) 氫氧化銨(氨水) 3ml 蒸餾水 1000ml 2.1%鹽酸酒精溶液 鹽酸

46、 1ml 70%酒精 99ml,三、石蠟切片染色中脫蠟、水洗、 脫水和透明等的作用,石蠟 去石蠟 去二甲苯 水化 顏色 二甲苯 酒精 水 染液 透明 脫水

47、 水分 二甲苯 酒精,,,,,,,,四、染色程序,(一)脫蠟至水 石蠟切片 冰凍切片 1.二甲苯(Ⅰ) 5分鐘 2.二甲苯(Ⅱ) 5分鐘 3.

48、無水酒精(Ⅰ) 5分鐘 4.無水酒精(Ⅱ) 5分鐘 5.95%酒精 5分鐘 6.80%酒精 1分鐘 7.70%酒精

49、 1分鐘 8.自來水 2分鐘 3分鐘 9.蒸餾水 1分鐘 1分鐘,(二)染色

50、 石蠟切片 冰凍切片 1.蘇木素液 5-15分鐘 1-2分鐘 2.自來水洗 1分鐘 30秒 3.酸性分化液(鏡下控制) 30秒 20秒

51、 4.自來水藍化 20分鐘 20秒 5.稀氨水 30秒 6. 蒸餾水 10秒

52、 20秒 7.70%酒精 3分鐘 3分鐘 8.80%酒精 3分鐘 3分鐘 9.沉淀酸化伊紅乙醇液 30秒 30秒,(三)脫水、透明和封片

53、 石蠟切片 冰凍切片 1.95%酒精(Ⅰ) 1分鐘 1分鐘 2.95%酒精(Ⅱ) 1分鐘 1分鐘 3.無水酒精(Ⅰ)

54、 5分鐘 3分鐘 4.無水酒精(Ⅱ) 5分鐘 3分鐘 5.無水酒精(Ⅲ) 5分鐘 3分鐘 6.無水酒精+二甲苯(1:1) 5分鐘 3分鐘 7.二甲苯(Ⅰ)

55、 5分鐘 3分鐘 8.二甲苯(Ⅱ) 5分鐘 3分鐘 9.二甲苯(Ⅲ) 5分鐘 3分鐘 10.中性樹膠封片,五、染色注意事項,1.染色前需烘烤切片,并立即進行染色 2.切片脫蠟后,應保持切

56、片在液體中,防止干燥。脫蠟溫度應在25℃左右環(huán)境中進行,時間可適當延長 3.獲得好的染色效果,需選擇合適的固定液和固定時間 4.染色時間應根據(jù)染液的種類、新舊、組織種類、固定液種類及環(huán)境溫度等而定 5.蘇木精染色后,分色和藍化應在顯微鏡下進行,以細胞核染色清晰,而胞質(zhì)等基本無色為佳,6.伊紅水溶液染色的切片,易被低濃度酒精脫水時洗掉。最好在脫水至95%酒精時,進行伊紅乙醇液染色,然后脫水透明

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