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文檔簡介
1、目的: 自兔骨髓中分離獲取高純度的骨髓基質(zhì)干細胞(Bone Marrow Stromal Cells,BMSC)并對其進行體外培養(yǎng)、擴增;將部分BMSC向內(nèi)皮細胞(Endothelial Cells,EC)誘導,并鑒別其表型;觀察低氧條件下BMSC及其來源的EC聯(lián)合培養(yǎng)后,BMSC的增殖情況及體外成骨能力,探討低氧條件下BMSC與其來源的EC聯(lián)合培養(yǎng)對其體外成骨能力的影響。 方法: 1.兔骨髓基質(zhì)干細胞(BMSC
2、)的分離、培養(yǎng) 利用Percoll分離液(相對密度1.077)進行密度梯度離心法從兔骨髓中分離骨髓基質(zhì)干細胞,進行體外培養(yǎng)擴增。 2.骨髓基質(zhì)干細胞向內(nèi)皮細胞的誘導分化、培養(yǎng)和鑒定 采用細胞性狀穩(wěn)定的第二代骨髓基質(zhì)干細胞消化,吹打均勻,更換培養(yǎng)液為內(nèi)皮誘導培養(yǎng)液,兩三天換液持續(xù)誘導,消化傳代后,取細胞做CD34免疫細胞化學鑒定其內(nèi)皮細胞表型。 3.MTT法檢測低氧條件下BMSC與其誘導來源的EC聯(lián)合培養(yǎng)的
3、細胞增殖及活力 取第二代骨髓基質(zhì)干細胞與其誘導來源的內(nèi)皮細胞,實驗分四組:(1)BMSC常氧培養(yǎng)組;(2)BMSC低氧培養(yǎng)組;(3)BMSC+EC常氧聯(lián)合培養(yǎng)組;(4)BMSC+EC低氧聯(lián)合培養(yǎng)組。體外連續(xù)培養(yǎng)7天,分別在此7天內(nèi)用MTT檢測各組細胞的增殖能力,酶標儀測定光密度值(OD值),每個樣本設(shè)六個復孔,求其平均值并繪制細胞生長曲線。 4.檢測低氧條件下BMSC與其誘導來源的EC聯(lián)合培養(yǎng)的成骨能力 取第三代
4、骨髓基質(zhì)干細胞與其誘導來源的內(nèi)皮細胞,實驗分四組:(1)BMSC常氧成骨誘導培養(yǎng)組;(2)BMSC低氧成骨誘導培養(yǎng)組;(3)BMSC+EC常氧成骨誘導聯(lián)合培養(yǎng)組:(4)BMSC+EC低氧成骨誘導聯(lián)合培養(yǎng)組。96孔板內(nèi)體外連續(xù)誘導培養(yǎng)6天,分別在此6天內(nèi)用PNPP法檢測各組細胞的堿性磷酸酶(ALP)活性的表達,酶標儀測定光密度值(OD值),每個樣本設(shè)五個復孔,求其平均值,并繪制ALP活性增長曲線;6孔板內(nèi)四組樣本體外連續(xù)誘導培養(yǎng)7天,在第
5、7天行茜素紅染色,觀察礦化結(jié)節(jié)形成情況。 結(jié)果: 1.密度梯度離心結(jié)合貼壁獲取高純度的BMSC,且較好保持了細胞的活性,貼壁3天后細胞成長梭形及多角形,五六天后增殖迅速,形成細胞集落。傳代后細胞形態(tài)更加單一,五六天后即可鋪滿瓶底。 2.由BMSC誘導來源的原代EC培養(yǎng)三天后,細胞貼壁,五天后明顯集落形成,細胞成梭形:傳代后,細胞逐漸變大,由長梭形變?yōu)槎嘟切?,成典型的“鋪路石”樣?nèi)皮細胞形態(tài)。傳代后的內(nèi)皮細胞CD3
6、4免疫細胞化學染色為陽性。 3.MTT法檢測各組細胞增殖及活力顯示:第一、二天各組細胞數(shù)量無明顯增加且統(tǒng)計學上各組間細胞增殖能力沒有顯著性差異(P>0.05);第三天后,各組細胞數(shù)量顯著增加,統(tǒng)計學上低氧培養(yǎng)組的細胞增殖能力均明顯高于常氧培養(yǎng)組(P<0.01),但同條件下的BMSC單獨培養(yǎng)組和BMSC+EC聯(lián)合培養(yǎng)組間的細胞增殖能力沒有顯著性差異(P>0.05)。 4.PNPP法檢測各組ALP活性表達顯示:BMSC+EC
7、低氧成骨誘導聯(lián)合培養(yǎng)組的ALP活性表達明顯高于其他三組(P<0.05);BMSC低氧成骨誘導培養(yǎng)組高于BMSC常氧成骨誘導培養(yǎng)組(P<0.05);BMSC+EC常氧成骨誘導聯(lián)合培養(yǎng)組高于BMSC常氧成骨誘導培養(yǎng)組(P<0.05);四組樣本培養(yǎng)七天后,BMSC+EC低氧成骨誘導聯(lián)合培養(yǎng)組部分細胞密集生長區(qū)有礦化結(jié)節(jié)形成,茜素紅染色呈橘紅色,其他三組未見。 結(jié)論: 1.BMSC可通過密度梯度離心結(jié)合貼壁培養(yǎng)獲得。在一定的體外
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