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文檔簡(jiǎn)介
1、半個(gè)世紀(jì)以來(lái),心肺復(fù)蘇后的低生存率狀況并沒(méi)有得到根本性的改觀,使得人們開始把目光從心肺復(fù)蘇術(shù)技術(shù)本身轉(zhuǎn)向如何更為科學(xué)有效的進(jìn)行復(fù)蘇后治療[1]?;謴?fù)缺血組織的血供可以阻止細(xì)胞損害的加重,但非常遺憾的是,它又不可避免地引發(fā)了一系列復(fù)雜而嚴(yán)重的缺血再灌注損害(ischemia-reperfusion injury,IRI),并成為復(fù)蘇后綜合征的直接原因。腦在整個(gè)心肺復(fù)蘇的病理生理過(guò)程中,無(wú)論是缺血階段還是再灌注階段都最為敏感和易損。因而腦復(fù)
2、蘇成敗就成為了救治復(fù)蘇后死亡和功能障礙的關(guān)鍵。近年來(lái),醫(yī)學(xué)工作者開始關(guān)注最為常規(guī)的復(fù)蘇治療方式-氧療,探索不同氧治療策略對(duì)心肺復(fù)蘇腦功能保護(hù)的影響。
心肺復(fù)蘇后重新恢復(fù)氧輸送對(duì)通過(guò)氧化磷酸化途徑而恢復(fù)能量物質(zhì)(adenosine triphosphate,ATP)的合成至關(guān)重要。然而,大量研究表明過(guò)量過(guò)快的恢復(fù)供氧卻加重了再灌注后的組織細(xì)胞損傷,究其原因可能為再灌注的早期階段的氧自由基爆發(fā)性生成。理論上,再灌注早期階段高氧分壓
3、環(huán)境可能會(huì)增加活性氧(reactive oxygen species,ROS)的產(chǎn)生,從而加重氧化應(yīng)激損傷,與氧相關(guān)的再灌注氧化應(yīng)激損傷也就不可避免的發(fā)生了。氧化應(yīng)激源于促氧化作用與抗氧化機(jī)制的失平衡和由此過(guò)多產(chǎn)生的ROS。腦對(duì)于ROS具有極高的敏感性,原因在于其特殊的生化和生理特性:它含有大量不飽和脂肪酸,可直接與自由基發(fā)生作用;腦內(nèi)自由基防御系統(tǒng)不完善,參與清除自由基的酶類或其它物質(zhì)如超氧化物歧化酶(superoxide dismu
4、tase,SOD)、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GSH-Px)、過(guò)氧化氫酶(catalase,CAT)和維生素E等含量較少等,當(dāng)某些因素誘發(fā)氧自由基大量產(chǎn)生時(shí),遠(yuǎn)遠(yuǎn)超過(guò)細(xì)胞自身的抗氧化能力,就可以導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)大分子損傷,進(jìn)而引起細(xì)胞受損、死亡或凋亡。既然氧自由基在心肺復(fù)蘇過(guò)程中存在的負(fù)面作用,以及理論上在復(fù)蘇再灌注階段提高氧輸送可能增加氧自由基的產(chǎn)生,那么人們開始對(duì)氧在心肺復(fù)蘇過(guò)程中的地位加以反思,對(duì)以往心肺復(fù)蘇后氧治療的隨意性提出質(zhì)疑。
5、 目前國(guó)際上針對(duì)心肺復(fù)蘇尚沒(méi)有清晰明確的氧治療策略,為數(shù)不多的研究成果并沒(méi)有給出足夠的證據(jù)以明確心肺復(fù)蘇預(yù)后情況與吸入何種濃度氧之間有必然的聯(lián)系,更缺少大樣本的臨床研究加以支持。然而高的吸入氧濃度并不一定意味著高的氧輸送,在組織缺血再灌注這一病理生理過(guò)程中,低灌注甚至無(wú)灌注一直沒(méi)有有效的治療手段加以克服,當(dāng)處于低灌注狀況下,提高氧輸送的唯一辦法就只能是提高循環(huán)體液的氧分壓水平,即提高吸入氧濃度來(lái)改善氧合狀況。在這種情況下,如何來(lái)平衡提
6、高供氧和減少再灌注氧化損害之間的矛盾關(guān)系,將成為今后腦復(fù)蘇領(lǐng)域亟待解決的重要課題。
本課題采用阻斷雄性長(zhǎng)爪沙鼠雙側(cè)頸總動(dòng)脈(bilateral carotid artery occlusion,BCAO)再開放法,建立急性全腦缺血再灌注動(dòng)物模型,模擬腦復(fù)蘇過(guò)程中海馬CA1區(qū)羥自由基水平的動(dòng)態(tài)變化過(guò)程,探討不同濃度、不同時(shí)相的氧療干預(yù)對(duì)羥自由基生成以及氧化應(yīng)激的影響,并進(jìn)一步研究缺血再灌注損傷對(duì)中樞神經(jīng)細(xì)胞能量代謝影響及機(jī)制,探
7、索更科學(xué)合理、切實(shí)可行的腦復(fù)蘇氧治療策略。
實(shí)驗(yàn)材料及方法:
一、實(shí)驗(yàn)動(dòng)物
選取健康雄性長(zhǎng)爪沙鼠,體重70-95g,由首都醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,清潔度為普通級(jí),常規(guī)飼料,自由飲水,溫度22±1℃,濕度50%左右,明/暗周期為12h,動(dòng)物實(shí)驗(yàn)經(jīng)盛京醫(yī)院醫(yī)學(xué)倫理委員會(huì)批準(zhǔn),倫理學(xué)編號(hào):2013PS139K
二、建立腦立體定位微透析及全腦缺血再灌注動(dòng)物模型
長(zhǎng)爪沙鼠適應(yīng)實(shí)驗(yàn)室環(huán)境5-7天后
8、,10%水合氯醛(按體重0.30ml/100g)腹腔注射麻醉,固定于腦立體定位儀,行頭部皮膚矢狀切口,暴露右側(cè)半球顱骨,參考立體定位解剖圖譜及預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果定位右側(cè)海馬CA1區(qū)坐標(biāo)(前囟后2mm,旁開2mm,硬腦膜下2.5mm),鉆取直徑2mm骨窗,垂直插入自制微透析導(dǎo)軌,骨水泥并覆蓋顱骨創(chuàng)面。所有沙鼠術(shù)后均單獨(dú)飼養(yǎng)并恢復(fù)1天。
微透析導(dǎo)軌植入術(shù)后24小時(shí),觀察實(shí)驗(yàn)動(dòng)物無(wú)任何行為、功能異常。常規(guī)麻醉鼠板固定,頸前正中切口,于雙側(cè)胸
9、鎖乳突肌及氣管旁間隙暴露頸動(dòng)脈鞘,仔細(xì)分離雙側(cè)頸總動(dòng)脈及迷走神經(jīng),無(wú)創(chuàng)顯微動(dòng)脈夾阻斷并計(jì)時(shí)(10分鐘)后開放阻斷,以動(dòng)脈顏色變紅及血流搏動(dòng)證實(shí)再灌注成功,建立全腦缺血再灌注模型。
阻斷雙側(cè)頸總動(dòng)脈前30分鐘,給予沙鼠經(jīng)口氣管插管及機(jī)械通氣,設(shè)定定容通氣模式,VT2.5ml,f70次/分,I∶E=1∶1,F(xiàn)1O2:30%,再灌注建立后按簡(jiǎn)單隨機(jī)法分組并調(diào)整F1O2:常壓常氧治療組(NO,F(xiàn)1O2:30%2小時(shí))、常壓高氧治療組(
10、HO,F(xiàn)1O2:100%2小時(shí))及延遲常壓高氧治療組(DHO,F(xiàn)1O2:30%1h then100%1h total2 h)以及正常對(duì)照組(Sham-Control),共4組。
股動(dòng)脈插管,監(jiān)測(cè)血壓(平穩(wěn)無(wú)顯著波動(dòng))及血?dú)獠蓸印?br> 調(diào)整呼吸機(jī)參數(shù)維持血?dú)庵笜?biāo):PaO260-70mmHg(常壓常氧)或PaO2>300mmHg(常壓高氧),PaCO235-50 mmHg,PH7.35-7.45。
直腸溫度監(jiān)測(cè):烤
11、燈維持體溫37±0.5℃
三、主要實(shí)驗(yàn)方法
1、采用活體腦立體定位微透析對(duì)海馬CA1區(qū)連續(xù)采樣,高效液相色譜-電化學(xué)法(high performance liquid chromatography-electrochemical detect,HPLC-ECD)定量檢測(cè)微透析液中二羥基苯甲酸(dihydroxybenzoic acid,DHBA)。
2、采用Western blot雜交技術(shù)檢測(cè)海馬組織低氧誘
12、導(dǎo)因子(hypoxia-induciblefactor-1,HIF-1α)、丙酮酸脫氫酶激酶1(pyruvate dehydrogenase kinase1,PDK1)表達(dá)
3、采用RT-PCR技術(shù)檢測(cè)海馬組織中HIF-1αmRNA、PDK1mRNA的表達(dá)。
4、采用免疫組化技術(shù)檢測(cè)腦內(nèi)HIF-1α、PDK1的表達(dá)與定位。
5、采用ELISA試劑盒檢測(cè)超氧化物歧化酶(SOD)、過(guò)氧化氫酶(CAT)、丙二醛(
13、malondialdehyde,MDA)、丙酮酸脫氫酶(pyruvate dehydrogenase,PDH)活性及磷酸化丙酮酸脫氫酶(phosphorylated PDH E1α subunit ser232,PDHA1-S232)含量。
6、采用尼氏染色及透射電鏡技術(shù)對(duì)進(jìn)行神經(jīng)元形態(tài)學(xué)及亞細(xì)胞器檢測(cè)。
結(jié)果:
1、全腦缺血再灌注及腦立體定位微透析長(zhǎng)爪沙鼠模型建立:全腦缺血時(shí)間,即BCAO時(shí)間選定為10分
14、鐘,滿足對(duì)組織內(nèi)羥自由基捕獲及檢測(cè)的穩(wěn)定性,同時(shí)降低造模及術(shù)后觀察期間實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的死亡率;微透析探針準(zhǔn)確定位于沙鼠右側(cè)半球海馬CA1區(qū);在設(shè)定色譜條件下DHBA在0.125-100 ng/ml之間存在良好峰高線性關(guān)系,檢測(cè)方法敏感性高、重復(fù)性好,室溫條件下5次進(jìn)樣10 ng/ml2.3-DHBA及2.5-DHBA標(biāo)準(zhǔn)品溶液,測(cè)得的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)分別為6.5%和6.1%,而10次進(jìn)樣50 ng/ml2.3-DFIBA及2.5-DHB
15、A標(biāo)準(zhǔn)品溶液,測(cè)得的RSD分別為2.9%和3.3%,微透析探針在穩(wěn)定1小時(shí)條件下,對(duì)2.3-DHBA及2.5-DHBA標(biāo)準(zhǔn)品液的回收率(n=5)分別為(69.1±4.6)%和(74.3±3.2)%,最終可以達(dá)到對(duì)連續(xù)微透析液采樣監(jiān)測(cè)目標(biāo)物濃度變化的技術(shù)要求。
2、全腦缺血再灌注這一病理生理過(guò)程中,海馬CA1區(qū)存在再灌注早期ROS,特別是·HO(2.3-DHBA、2.5-DHBA)的爆發(fā)性生成,DHBA的濃度具有動(dòng)態(tài)演變及時(shí)效性
16、特點(diǎn),供氧濃度變化對(duì)DHBA有直接影響:①全腦缺血階段,微透析液中2.3-DHBA及2.5-DHBA濃度保持穩(wěn)定,較對(duì)照組無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05)。②再灌注早期階段,NO及HO組微透析液中2.3-DHBA及2.5-DHBA濃度均呈現(xiàn)爆發(fā)性升高,達(dá)峰值后逐漸降低回正常水平,整個(gè)動(dòng)態(tài)演變過(guò)程于再灌注2小時(shí)內(nèi)完成,其中NO組中2.3-DHBA濃度較對(duì)照組明顯升高(P<0.05)的時(shí)間節(jié)點(diǎn)為:10-40min共4點(diǎn),2.5-DHBA濃度較對(duì)
17、照組明顯升高(P<0.05)的時(shí)間節(jié)點(diǎn)為:10-50min共5點(diǎn);HO組中2.3-DHBA濃度較對(duì)照組明顯升高(P<0.05)的時(shí)間節(jié)點(diǎn)為:10-60min共6點(diǎn),2.5-DHBA濃度較對(duì)照組明顯升高(p<0.05)的時(shí)間節(jié)點(diǎn)為:10-80min共8點(diǎn)。此外,HO組2.3-DHBA濃度較NO組明顯升高(P<0.05)時(shí)間節(jié)點(diǎn)位于10-60min共6點(diǎn),而2.5-DHBA濃度較NO組明顯升高(P<0.05)時(shí)間節(jié)點(diǎn)位于20-80min共7
18、點(diǎn)。⑧以NO組DHBAs動(dòng)態(tài)變化規(guī)律為基礎(chǔ)設(shè)計(jì)的DHO組(F1O2:30%1小時(shí)再100%1小時(shí),總計(jì)2小時(shí)),在10-120min的各個(gè)時(shí)間節(jié)點(diǎn)監(jiān)測(cè)微透析液中2.3-DHBA及2.5-DHBA濃度變化較NO組均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
3、全腦缺血再灌注的早期階段(再灌注2小時(shí)),其海馬、皮質(zhì)組織中抗氧化酶SOD、CAT活性明顯降低,而脂質(zhì)過(guò)氧化產(chǎn)物MDA則顯著升高,同時(shí)氧暴露濃度變化對(duì)MDA有直接影響:①NO、HO及
19、DHO組SOD、CAT活性相比對(duì)照組均有明顯降低(P<0.05),但各組間比較無(wú)明顯差異(P>0.05);同時(shí)NO、HO及DHO組MDA較對(duì)照組顯著升高(P<0.05);同時(shí)NO、DHO組間比較MDA濃度無(wú)差異(P<0.05),但二者和HO組比較,HO組中海馬、皮質(zhì)組織MDA濃度較NO、DHO兩組均有顯著增加(P<0.05)。
4、PDH活性檢測(cè):再灌注2小時(shí)NO、HO、DHO組海馬、皮質(zhì)組織內(nèi)PDH活性較對(duì)照組均有降低,其中
20、NO及HO兩組與對(duì)照組間有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),而DHO組與對(duì)照組比較減低不明顯(P>0.05),DHO組PDH活性較NO、HO組增加有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
5、PDHA1-S232磷酸化檢測(cè):再灌注2小時(shí)各組海馬、皮質(zhì)組織內(nèi)磷酸化PDHAl-S232程度較對(duì)照組均有增高,其中NO組較HO、DHO組的磷酸化水平增高顯著(P<0.05)。
6、全腦缺血再灌注導(dǎo)致海馬及皮質(zhì)內(nèi)HIF-1α、PDK1/PDK1
21、 mRNA表達(dá)增高,而再灌注階段高濃度氧暴露能夠抑制HIF-1α、PDK1/PDK1 mRNA的高表達(dá):再灌注2小時(shí),NO組HIF-1α、PDK1/PDK1 mRNA表達(dá)較對(duì)照組明顯增高(P<0.05);HO組HIF-1α、PDK1/PDK1 mRNA表達(dá)較對(duì)照組增高不明顯(P>0.05); DHO組HIF-1αt、PDK1/PDK1 mRNA表達(dá)同樣與對(duì)照組比較增高不顯著(P>0.05);NO組與HO及DHO組比較HIF-1α、PDK
22、1/PDK1 mRNA表達(dá)增高(P<0.05);四組HIF-1α mRNA表達(dá)均無(wú)顯著差異(P>0.05)。
7、形態(tài)學(xué)檢測(cè):再灌注7天透射電鏡下DHO組海馬CA1區(qū)也有更好的亞細(xì)胞器(細(xì)胞核、線粒體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng))完整性;而尼氏染色DHO組也較NO、HO組海馬CA1區(qū)也有更好的神經(jīng)元排列及尼氏小體表達(dá)。
結(jié)論:
1、全腦缺血再灌注早期海馬CA1區(qū)發(fā)生爆發(fā)性的羥自由基(·HO)生成,其峰值出現(xiàn)在再灌注的10-20
23、min,而顯著升高的時(shí)間段為50min以內(nèi);常壓高濃度氧暴露(純氧)可以顯著地增加·HO生成的強(qiáng)度,表現(xiàn)為其峰值明顯增高且持續(xù)時(shí)間顯著延長(zhǎng)達(dá)到70min;當(dāng)給予延遲的常壓高濃度供氧(再灌注60min以后給予純氧暴露),其對(duì)再灌注·HO的生成較常壓常氧干預(yù)無(wú)明顯差異。得出結(jié)論:全腦缺血再灌注后ROS的爆發(fā)性生成是一對(duì)時(shí)間及氧暴露濃度雙重依賴的病理生理學(xué)過(guò)程。
2、全腦缺血再灌注階段不同的氧暴露方式均對(duì)腦組織抗氧化系統(tǒng)(SOD、C
24、AT)造成顯著抑制;同時(shí)其脂質(zhì)過(guò)氧化損傷也有顯著增強(qiáng),這一特征在給予高濃度氧暴露時(shí)更為明顯,但延遲常壓純氧暴露與常壓常氧比較并未見有額外加重的脂質(zhì)過(guò)氧化損傷。
3、延遲常壓高高氧干預(yù)可以改善再灌注階段PDH的活性,有利于恢復(fù)和促進(jìn)腦組織的有氧能量代謝,其機(jī)制可能但不完全為:①不進(jìn)一步加重PDH的過(guò)氧化損傷;②改善再灌注階段組織細(xì)胞內(nèi)乏氧環(huán)境,通過(guò)增加HIF-1α胞漿內(nèi)分解,進(jìn)而降低其下游PDK1的表達(dá),導(dǎo)致PDHA1-S232
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